Методические указания по методам контроля МУК 4.2.026-95 Экспресс-метод определения антибиотиков в пищевых продуктах.
МУК 4.2.026-95
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ
4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ
Экспресс-метод определения антибиотиков в пищевых продуктах
Дата введения: с момента утверждения
Предисловие
1. РАЗРАБОТАНЫ сотрудниками ПНИЛ новых антибиотиков и кафедры микробиологии Российской медицинской академии последипломного образования, Институтом питания РАМН (Шендерович В.А., Пастернак Н.А., Столяровой Л.Г., Соловьевой В.Е., Власовой И.В., Ведьминой Е.А., Шевелевой С.А.).
2. УТВЕРЖДЕНЫ И ВВЕДЕНЫ В ДЕЙСТВИЕ Председателем Госкомсанэпиднадзора России - Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Е.Н.Беляевым 29 марта 1995 года.
3. ВВЕДЕНЫ ВПЕРВЫЕ в качестве дополнения к "Методическим указаниям по определению остаточных количеств антибиотиков в продуктах животноводства", утв. Минздравом СССР N 3049-84.
1. Область применения
Методические указания предназначены для центров государственного санитарно-эпидемиологического надзора и других организаций, осуществляющих контроль за качеством продуктов питания.
2. Сущность метода
Методические указания содержат описание ускоренного метода качественного и количественного обнаружения антибиотиков в пищевых продуктах и других субстратах, основанного на подавлении антибиотиком дегидрогеназной активности тест-культур в жидкой питательной среде. (1)
Дегидрогеназы-ферменты активируют процессы дыхания в живой клетке. Повреждение дегидрогеназ приводит к нарушению окислительно-восстановительных процессов и гибели клетки.
Высокая чувствительность этих ферментов к неблагоприятным воздействиям использована для выявления повреждающего действия антибиотика на различные тест-культуры. В методе используется способность клеток тест-культур восстанавливать метиленовый синий в анаэробных условиях. Если антибиотик оказывает цитотоксическое действие, клетки тест-культур лишаются такой возможности и метиленовый синий не восстанавливается. Метиленовый синий играет в этой системе одновременно роль акцептора водорода и индикатора, позволяющего судить о повреждающем действии антибиотиков на клеточные дегидрогеназы за определенный отрезок времени.
Данные сравнительного изучения экспресс-метода с общепринятым (диффузии в агар) свидетельствуют о высокой степени корреляции (коэффициент Р=0,84-0,93 и значим с вероятностью 99,9%).
Преимущество экспресс-метода заключается в возможности получения ответа через 4-5 ч, относительной простоте и значительной экономии питательной среды.
Методика может быть осуществлена как в качественном, так и в количественном варианте, при этом при подсчете концентрации выявленного загрязнения использован титрационный принцип, в определенной степени облегчающий постановку анализа в баклабораториях и позволяющий получить достоверные результаты без построения стандартной кривой или расчета по таблицам активности антибиотиков.
Лабораторный контроль, позволяющий выявить непосредственные источники загрязнения, принимать меры, снижающие контаминацию продуктов и, соответственно, риск для потребителей, целесообразно, главным образом, осуществлять в первичном звене получения животноводческой продукции: на молочно-товарных фермах, птицефабриках, в убойных и мясоперерабатывающих цехах хозяйств и т.п., сельскохозяйственных предприятиях, получающих и перерабатывающих продовольственное сырье животного происхождения. Готовая животноводческая продукция также должна контролироваться путем периодического отбора на молочных заводах, мясокомбинатах, птицеперерабатывающих заводах и т.п.
Допустимое содержание антибиотиков в продуктах не должно превышать для тетрациклинов 0,01 ЕД, пенициллина 0,01 ЕД, для стрептомицина 0,5 ЕД на 1 г (мл) продукта. (2)
Метод состоит из нескольких этапов:
1. Подготовка проб к исследованию при качественном и количественном определении.
2. Получение и хранение взвеси клеток тест-культур.
3. Определение "рабочей дозы" тест-культур.
4. Определение концентрации антибиотиков и расчет активности.
5. Определение концентрации антибиотиков в испытуемом растворе.
6. Качественное определение антибиотиков.
3. Этапы исследования
3.1. Подготовка проб к исследованию при качественном и количественном определении
3.1.1. Подготовка проб к исследованию при качественном определении
Молоко и сливки жидкие (в сыром или пастеризованном виде)
Сухие молочные продукты (сухое молоко, сухие сливки, сухие детские молочные продукты, изготовленные на основе коровьего молока)
Яйца, меланж
Мясо и субпродукты
Термическая обработка проб пищевых продуктов
Перед проведением исследования пробирки с отобранными пробами (см. п.3.1.1) помещают в водяную баню с температурой (60±1) °С. Параллельно с испытуемыми образцами в водяную баню помещают пробирки с аналогичным продуктом и термометром. Время прогревания - 30 мин - отмечают от момента достижения температуры внутри пробирки.
3.1.2. Подготовка проб к исследованию при количественном определении.
Молоко, молочные продукты и яйца
Для определения концентрации антибиотика в молоке, жидких молочных продуктах, кроме кисломолочных, яйцах, пробы, подготовленные к исследованию (см. п.3.1.1) в количестве 10 мл или 10 г (смешанного содержимого каждого яйца) вносят в колбы емкостью 50 мл и добавляют равное количество (10 мл) буферного раствора соответственно определяемому антибиотику: при определении тетрациклина - цитратно-солянокислый буфер N 2; стрептомицина или пенициллина - фосфатный буфер N 4 и N 1 соответственно. Таким образом, получают пробы для исследования, разведенные в 2 раза.
Мясо и мясные продукты
Навески по 10 г мышечной ткани, почки, печени, легкого и т.д., вырезанные из средней части образца, измельчают ножницами или микроразмельчителем тканей с последующим растиранием в ступке со стерильным кварцевым песком. Затем в ступку добавляют 10 мл соответствующего буфера, тщательно перемешивают и переносят в центрифужные пробирки. Экстракцию антибиотика проводят в течение 90 мин в термостате при температуре (37±1) °С. Затем пробы прогревают на водяной бане при температуре (65±1) °С 30 мин и центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин. Из надосадочной жидкости, являющейся первым разведением 1:2, берут 1 мл и прибавляют 1 мл соответствующего буфера, получают второе разведение 1:4 и т.д. Концентрацию антибиотика определяют в надосадочной жидкости, полученной от каждого образца мяса и мясных продуктов.
3.2. Получение и хранение взвеси клеток тест-культур
Для определения пенициллина и стрептомицина предпочтительно пользоваться спорообразующими тест-культурами:
Вас. subtilis, вар. 6633; Вас. mycoides 537 u Micrococcus luteum АТСС 9341;
Музейные штаммы вегетативных форм тест-культур хранят в столбике полужидкого (0,4%) питательного агара.
Вначале тест-культуру рассевают на чашки с 2%-ным мясопептонным агаром для получения отдельных колоний. Чашки ставят в термостат при температуре (37±1) °С на 20±3 ч. После чего мелкие колонии отсевают в пробирки с 2%-ным мясопептонным скошенным агаром и вновь инкубируют в термостате при температуре (37±1) °С в течение 20±3 ч.
Микробную взвесь готовят путем смыва физиологическим раствором суточной культуры со скошенного агара. Важно, чтобы смыв культур был абсолютно гомогенным и не содержал комочков. Полученную взвесь хранят в холодильнике при температуре (4±1) °С не более 7 дней.
3.3. Определение "рабочей дозы" тест-культур
Поскольку количество жизнеспособных клеток тест-культуры от смыва к смыву варьирует, предварительно необходимо определить "рабочую дозу" тест-культуры, т.е. наибольшее разведение суспензии, вызывающее обесцвечивание метиленового синего в определенное время в термостате при температуре (37±1) °С. Следует учитывать, что время обесцвечивания метиленового синего обратно пропорционально количеству клеток в смыве.
Для постановки реакции выбрано время обесцвечивания, равное 1 ч. Это время, будучи величиной постоянной, выявляет в суспензиях различной плотности одну и ту же клеточную нагрузку для каждой тест-культуры в отдельности. "Рабочую дозу" тест-культур устанавливают по дегидрогеназной активности клеток.
3.3.1. Методика определения "рабочей дозы" тест-культуры
Полученную взвесь тест-культур титруют путем последовательных двукратных разведений в объеме 1 мл питательного бульона. Пробирки с тест-культурой встряхивают и помещают в термостат при температуре (37±1) °С на 3 ч. Затем для создания условий, близких к анаэробным, в каждую пробирку вносят по 2 мл растопленного и охлажденного до температуры (45±1) °С 1%-ного питательного агара с метиленовым синим и глюкозой (оба ингредиента асептично вносят в растопленный 1%-ный питательный агар из расчета: на 100 мл среды 0,4 мл 0,5%-ного водного раствора метиленового синего и 1 мл 40%-ного раствора глюкозы). Пробирки встряхивают и вновь инкубируют в термостате при температуре (37±1) °С в течение 1-2 ч, после чего учитывают результат (табл.1). Дыхательные ферменты бактериальных клеток тест-культур восстанавливают метиленовый синий в анаэробных условиях, и содержимое пробирок, имеющее синий цвет, обесцвечивается. Разведение тест-культуры в последней пробирке с обесцвеченным метиленовым синим (+) принимают за "рабочую дозу". Функциональная активность дегидрогеназ тест-культур стабилизируется через сутки после получения смыва, который хранится в холодильнике в течение 1 недели. Поэтому "рабочую дозу" первый раз определяют через сутки, а затем - через 3 дня.
Таблица 1
Определение "рабочей дозы" тест-культур
Тест-культуры | Время, ч | Учет интенсивности клеточного дыхания | |||||||||
|
| Разведения тест-культур | |||||||||
|
| 1:2 | 1:4 | 1:8 | 1:16 | 1:32 | 1:64 | 1:128 | 1:256 | 1:512 | 1:1024 |
B.subt., вар. 6633 | 1 | + | + | + | + | + | + | + | + | - | - |
B.subt., вар. L | 1 | + | + | + | + | + | + | + | + | + | - |
B.mycoides 537 | 1 | + | + | + | + | + | + | + | - | - | - |
Micrococcus luteum ATCC 9341 | 1 | + | + | + | + | + | + | - | - | - | - |
Обозначения: знак "плюс" (+) - полное обесцвечивание метиленового синего, знак "минус" (-) - отсутствие обесцвечивания.
Максимальное разведение тест-культур, вызывающее полное обесцвечивание метиленового синего и выявленное через 1 ч инкубации в термостате при 37 °С, принимают за "рабочую дозу".
В среднем, "рабочая доза" тест-культур определяется у:
Вас. subtilis, вар. 6633 | в разведении 1:256 |
Вас. subtilis, вар. L | в разведении 1:512 |
Вас. mycoides 537 | в разведении 1:128 |
Micrococcus luteum ATCC 9341 | в разведении 1:64 |
3.4. Количественное определение концентрации антибиотиков и расчет активности
При определении концентрации антибиотика в пищевых продуктах параллельно ставят контрольный ряд с известным содержанием антибиотика в пробирках. Для этого навеску стандарта антибиотика (1 мг) растворяют в 1 мл соответствующего буфера, получая, таким образом, основной раствор стандарта 1000 мкг/мл. Затем основной раствор десятикратно разводят до получения 100 мкг/мл и 10 мкг/мл. Далее концентрации, с которых начинается титрование стандарта в контрольном ряду (2,0; 1,0; 0,5 мкг/мл и т.д.), разводят соответствующими буферными растворами.
Титрование стандарта антибиотика и испытуемых образцов проводят путем двукратных разведений в объеме 0,5 мл мясопептонного бульона. Последняя пробирка в контрольном ряду не содержит антибиотик и служит контролем дегидрогеназной активности клеток тест-культуры.
После этого во все пробирки вносят 0,5 мл взвеси, содержащей двойную "рабочую дозу" тест-культуры, т.е. предпоследнее разведение тест-культуры, вызывающее обесцвечивание метиленового синего через 1 ч. В результате микробная нагрузка в пробирках уменьшается вдвое и соответствует "рабочей дозе" тест-культуры.
Пробирки встряхивают и помещают в термостат при температуре (37±1) °С на 3-часовую экспозицию тест-культуры с антибиотиком. Затем в каждую пробирку добавляют по 2 мл 1%-ного мясопептонного агара с метиленовым синим и глюкозой. Содержимое пробирок вновь смешивают и инкубируют при температуре (37±1) °С в термостате.
Если в исследуемом объекте содержится антибиотик, то он блокирует дыхательные ферменты бактериальных клеток тест-культур и вызывает их гибель. В этих пробирках метиленовый синий не обесцвечивается (- синий).
О степени активности антибиотика судят по его минимальной концентрации, которая вызывает полное подавление дегидрогеназ клеток тест-культур через 1 или 2 ч инкубации в термостате при температуре (37±1) °С по сравнению с контролем.
3.4.1. Определение концентрации бензилпенициллина, стрептомицина и тетрациклина
Приготовление стандарта бензилпенициллина
Во флакон, содержащий 500000 ЕД натриевой соли бензилпенициллина товарного препарата для инъекций, добавляют 10 мл 0,066 М фосфатного буфера рН 7,0. Концентрация исходного раствора пенициллина составляет 50000 ЕД/мл. Далее получают 5000 ЕД/мл, разводя этот раствор в 10 раз. К 1 мл этого раствора прибавляют 4 мл 0,066 М фосфатного буфера, рН 7,0. Получают основной раствор пенициллина - 1000 ЕД/мл. Затем разводят десятикратно 0,066 М фосфатным буфером, рН 7,0 до 100 и 10 ЕД/мл. После этого 0,5 мл последнего разведения, т.е. 5 ЕД/мл добавляют в 1-ю пробирку с заранее разлитым по 0,5 мл мясопептонным бульоном. Получают разведение пенициллина в 1-й пробирке - 2,5 ЕД/мл. Далее делают двукратные разведения антибиотика в 0,5 мл мясопептонного бульона. Во все пробирки добавляют 0,5 мл взвеси, содержащей двойную "рабочую дозу" тест-культуры. В результате микробная нагрузка во всех пробирках уменьшается вдвое и соответствует "рабочей дозе" тест-культуры, при этом концентрация пенициллина в 1-й пробирке уменьшается еще в 2 раза и соответствует 1,25 ЕД/мл. Таким образом, получают разведения пенициллина:
в 1-й пробирке 1,25 ЕД |
во 2-й пробирке 0,62 ЕД |
в 3-й пробирке 0,31 ЕД |
в 4-й пробирке 0,15 ЕД |
в 5-й пробирке 0,07 ЕД
|
в 6-й пробирке 0,035 ЕД |
в 7-й пробирке 0,017 ЕД |
в 8-й пробирке 0,008 ЕД |
в 9-й пробирке 0,004 ЕД. |
Последняя, 10-я пробирка не содержит антибиотик и служит контролем дегидрогеназной активности тест-культуры (табл.2).
Таблица 2
Концентрация стандарта бензилпенициллина
Время обесцвечивания метиленового синего, ч | Учет интенсивности клеточного дыхания Разведение антибиотика в ЕД/мл | Контроль тест-культуры | ||||||||
| 1,25 | 0,62 | 0,31 | 0,15 | 0,07 | 0,035 | 0,015 | 0,007 | 0,0035 | К |
1 | - | - | - | - | ± | + | + | + | + | + |
2 | - | - | - | - | - | + | + | + | + | + |
Обозначения: (+) - полное обесцвечивание метиленового синего, (±) - частичное обесцвечивание метиленового синего, (-) - отсутствие обесцвечивания.
Приготовление стандарта стрептомицина
Во флакон, содержащий 500000 ЕД стрептомицина сульфата товарного препарата для инъекций, добавляют 10 мл 0,066 М фосфатного буфера, рН 6,0-6,2. Концентрация исходного раствора стрептомицина составляет 50000 ЕД/мл. Далее исходный раствор разводят в 10 раз 0,066 М фосфатным буфером, рН 7,8-8,0. Получают раствор 5000 ЕД/мл.
Последующие разведения готовят на 0,066 М фосфатном буфере, рН 7,8-8,0, аналогично вышеописанной схеме к бензилпенициллину.
Приготовление стандарта тетрациклина
Для приготовления исходных растворов антибиотиков могут быть использованы лекарственные препараты антибиотиков или стандарты препаратов с известной активностью. В первичном растворе каждого антибиотика учитывают его активность в 1 мг (при использовании стандарта препарата) или содержание активного вещества в лекарственной форме (например, 100000 ЕД во флаконе). Основную концентрацию 1000 ЕД/мл или 1000 мкг/мл готовят, разводя препарат во флаконе, содержащем 100000 ЕД тетрациклина, в 100 раз.
При активности стандарта тетрациклина 850 мкг/мл в 10 мг навески содержится 8500 мкг антибиотика.
Для получения первого разведения основного раствора стандарта антибиотика в 1000 мкг устанавливают необходимый объем растворителя: 850х10=8500:1000=8,5 мл. Таким образом, навеску тетрациклина 10 мг растворяют в 8,5 мл 0,01Н HCI и получают концентрацию основного раствора 1000 мкг/мл. Приготовленный основной раствор может храниться в холодильнике в течение 7 дней.
Далее основной раствор 1000 мкг/мл разводят десятикратно цитратно-солянокислым буфером, рН 6,0-6,2, до 100 и 10 мкг/мл. Все последующие разведения готовят также на цитратно-солянокислом буфере, рН 6,0-6,2, и проводят расчеты активности стандарта тетрациклина аналогично схеме расчета по пенициллину и стрептомицину.
3.5. Определение концентрации антибиотиков в испытуемом растворе
Параллельно ставят второй ряд с двукратными разведениями испытуемого субстрата в пробирках с заранее разлитым мясопептонным бульоном в объеме 0,5 мл. Во все пробирки этого ряда также вносят 0,5 мл взвеси, содержащей двойную "рабочую дозу" тест-культуры (т.е. предпоследнее разведение тест-культуры, вызывающее полное обесцвечивание метиленового синего через 1 ч инкубации в термостате). В результате микробная нагрузка уменьшается вдвое и соответствует "рабочей дозе" тест-культуры.
Таким образом, 1-я пробирка каждого ряда, контрольного и испытуемого, начинается с разведения 1:4.
Последняя пробирка не содержит испытуемого субстрата и служит контролем ферментативной активности тест-культуры.
Пробирки встряхивают и помещают в термостат на 3-часовую экспозицию тест-культуры с антибиотиком. Затем для создания условий, близких к анаэробным, в каждую пробирку добавляют по 2 мл 1%-ного мясопептонного агара с метиленовым синим и глюкозой. Содержимое пробирок встряхивают и инкубируют в термостате при температуре (37±1) °С.
Учет результатов производят по тесту подавления антибиотиком дегидрогеназной активности тест-культуры через 1 или 2 ч инкубации в термостате (табл.3).
Пример
Таблица 3
Концентрация бензилпенициллина в испытуемом субстрате
Время обесцвечивания метиленового синего, ч | Учет интенсивности клеточного дыхания | Контроль тест-культуры | ||||||||
| Разведения испытуемого субстрата или образца |
| ||||||||
| 1:4 | 1:8 | 1:16 | 1:32 | 1:64 | 1:128 | 1:256 | 1:512 | 1:1024 | К |
1 | - | ± | + | + | + | + | + | + | + | + |
2 | - | - | + | + | + | + | + | + | + | + |
Концентрацию антибиотика в исследуемом субстрате с неизвестным его количеством вычисляют путем умножения последнего разведения субстрата, подавляющего дегидрогеназную активность тест-культуры (табл.3), на минимальную концентрацию антибиотика контрольного ряда стандарта, вызывающего тот же эффект (табл.2).
Как видно из табл.2, последнее разведение стандарта бензилпенициллина вызывает полное подавление активности дыхательных ферментов тест-культуры, по сравнению с контролем, только через 2 ч инкубации в термостате и составляет 0,07 ЕД/мл. Через 1 ч инкубации антибиотик вызывает лишь частичное подавление дегидрогеназной активности клеток.
Таким образом, концентрация пенициллина, вызывающая полное подавление дегидрогеназ клеток тест-культуры, соответствует 0,07 ЕД/мл через 2 ч инкубации в термостате при температуре (37±1) °С.
Учесть результат в данном опыте возможно только через 2 ч инкубации по полному подавлению дегидрогеназной активности клеток тест-культуры, которое наблюдается в разведении 1:8, так как через 1 ч инкубации испытуемый субстрат вызывает лишь частичное подавление активности дыхательных ферментов тест-культуры по сравнению с контролем (табл.3).
Содержание пенициллина в исследуемом субстрате вычисляют, умножив последнее разведение субстрата, подавляющее дегидрогеназную активность клеток тест-культуры, на минимальную концентрацию антибиотика контрольного ряда стандарта, вызывающего тот же эффект, т.е. 0,07х8=0,56 ЕД/мл. Таким образом, в испытуемом субстрате содержится 0,56 ЕД/мл пенициллина.
3.6. Качественное определение антибиотиков
Качественное определение антибиотиков в пищевых продуктах можно проводить по вышеописанной методике. (3.5)
3.6.1. Проведение анализа
Подготовленные к исследованию испытуемые пробы (см. 3.1.1) в объеме 0,5 мл вносят в пробирки с таким же (0,5 мл) количеством мясопептонного бульона и тщательно перемешивают. Во все пробирки добавляют 0,5 мл взвеси, содержащей двойную "рабочую дозу" тест-культуры.
Последняя пробирка не содержит испытуемого субстрата и служит контролем ферментативной активности тест-культуры.
Пробирки встряхивают и помещают в термостат на 3-часовую экспозицию тест-культуры с испытуемым субстратом.
После этого в каждую пробирку вносят по 2 мл растопленного и охлажденного до (45±1) °С мясопептонного агара с метиленовым синим и глюкозой. Содержимое пробирок смешивают и вновь инкубируют в термостате при температуре (37±1) °С в течение 1-2 ч.
3.6.2. Учет результатов
1. При отсутствии в испытуемых образцах антибиотика дыхательные ферменты бактериальных клеток тест-культур не нарушаются и восстанавливают (т.е. обесцвечивают) в анаэробных условиях метиленовый синий.
2. В контрольной пробирке, где нет испытуемого образца, также происходит обесцвечивание в течение 1-2 ч наблюдения в термостате при температуре (37±1) °С (контроль ферментативной активности бактериальных клеток тест-культуры).
3. При наличии антибиотика в испытуемом образце дыхательные ферменты бактериальных клеток блокируются, метиленовый синий не восстанавливается и пробирки не изменяются, цвет их остается синим.
4. Параллельно в качестве второго контроля можно использовать субстраты, содержащие определенную концентрацию антибиотика.
3.7. Растворы, применяемые для разведения стандартов антибиотиков и испытуемых образцов, реактивы
3.7.1. Бензилпенициллин
Основной раствор стандарта, рабочие разведения стандарта и испытуемый раствор готовят на буфере N 1 - 0,066 М фосфатный (рН 6,8-7,0).
Рецепт:
Калия фосфат однозамещенный - 3,63 г;
Натрия фосфат двузамещенный - 7,13 г;
Вода дистиллированная - до 1000 мл.
3.7.2. Стрептомицин сульфат
Основной раствор стандарта готовят на буфере N 3 0,066 М фосфатный (рН 6,0-6,2).
Рецепт:
Калия фосфат однозамещенный - 7,72 г;
Натрия фосфат двузамещенный - 1,78 г;
Вода дистиллированная - до 1000 мл.
Рабочие разведения стандарта и экстракцию испытуемых образцов готовят на буфере N 4 - 0,066 М фосфатный (рН 7,8-8,0).
Рецепт:
Калия фосфат однозамещенный - 0,68 г;
Натрия фосфат двузамещенный - 10,99 г;
Вода дистиллированная - до 1000 мл.
3.7.3. Тетрациклины
Основной раствор стандарта растворяют в 0,01 Н соляной кислоте (HCI).
Рабочие разведения стандарта и экстракцию испытуемых образцов готовят на буфере N 2 - цитратно-солянокислый (рН 5,8-6,0).
Рецепт:
Натрия цитрат трехзамещенный - 20,6 г;
Соляная кислота концентрированная - 1,81 мл;
Вода дистиллированная - до 1000 мл.
3.7.4. Мясопептонный бульон (МПБ), мясопептонный агар (МПА)
Производят согласно ГОСТу 9225-84*; ГОСТу 18963-73**.
3.7.5. 0,5%-ный водный раствор метиленового синего.
3.7.6. 40%-ный коммерческий раствор глюкозы.
Список литературы
1. Пастернак Н.А., Шендерович В.А., Ведьмина Е.А. Экспресс-метод определения концентрации антибиотиков в биологических жидкостях. Лабораторное дело, 1989, N 9.
2. Методические указания по определению остаточных количеств антибиотиков в продуктах животноводства. М., 1984.
3. Навашин С.М., Фомина И.П. Рациональная химиотерапия. М.: "Медицина", 1982.