ГОСТ 30347-97 Молоко и молочные продукты. Методы определения Staphylococcus aureus.
ГОСТ 30347-97
Группа Н19
МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ
МОЛОКО И МОЛОЧНЫЕ ПРОДУКТЫ
Методы определения Staphylococcus aureus
Milk and milk products. Methods for determination of staphylococcus aureus
МКС 07.100.30
ОКСТУ 9209
Дата введения 1998-07-01
Предисловие
1 РАЗРАБОТАН Всероссийским научно-исследовательским институтом мясной промышленности (ВНИМИ) и Межгосударственным и техническим комитетом по стандартизации МТК 186 "Молоко и молочные продукты"
ВНЕСЕН Госстандартом Российской Федерации
2 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол N 11 от 25 апреля 1997 г.)
За принятие проголосовали:
Наименование государства | Наименование национального органа по стандартизации |
Азербайджанская Республика | Азгосстандарт |
Республика Армения | Армгосстандарт |
Республика Беларусь | Госстандарт Беларуси |
Киргизская Республика | Киргизстандарт |
Республика Молдова | Молдовастандарт |
Российская Федерация | Госстандарт России |
Республика Таджикистан | Таджикгосстандарт |
Туркменистан | Главная государственная инспекция Туркменистана |
Республика Узбекистан | Узгосстандарт |
Украина | Госстандарт Украины |
3 Постановлением Государственного комитета Российской Федерации по стандартизации, метрологии и сертификации от 25 сентября 1997 г. N 341 межгосударственный стандарт ГОСТ 30347-97 введен в действие непосредственно в качестве государственного стандарта Российской Федерации с 1 июля 1998 г. с правом досрочного введения
4 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ
5 ПЕРЕИЗДАНИЕ. Август 2009 г.
1 ОБЛАСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ
Настоящий стандарт распространяется на молоко и молочные продукты, закваски, бактериальные концентраты и препараты и устанавливает два метода определения Staphylococcus aureus в определенном объеме или навеске продукта - определение количества с предварительным обогащением; определение количества без предварительного обогащения.
Метод определения Staphylococcus aureus с предварительным обогащением основан на высеве навески продукта и разведении его в жидкую селективную среду, инкубировании посевов, учете положительных пробирок (колб), пересеве на плотные селективные среды с последующим подтверждением принадлежности выросших колоний к Staphylococcus aureus.
Метод определения количества Staphylococcus aureus без предварительного обогащения посевом на агаризованные селективные среды основан на высеве продукта или разведении его на поверхности плотной среды, инкубировании, подсчете типичных колоний Staphylococcus aureus с последующим подтверждением выросших колоний к Staphylococcus aureus по плазмокоагулирующей способности.
2 НОРМАТИВНЫЕ ССЫЛКИ
В настоящем стандарте использованы ссылки на следующие стандарты:
ГОСТ 9225-84 Молоко и молочные продукты. Методы микробиологического анализа
ГОСТ 10444.11-89 Продукты пищевые. Методы определения молочнокислых микроорганизмов
ГОСТ 27583-88* Яйца куриные пищевые. Технические условия
________________
* На территории Российской Федерации действует ГОСТ Р 52121-2003.
3 СРЕДСТВА КОНТРОЛЯ И ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЕ УСТРОЙСТВА
3.1 Аппаратура, материалы, реактивы
по ГОСТ 9225 со следующими дополнениями:
сухая плазма кроличья, цитратная;
контрольный штамм Staphylococcus aureus;
мембранные фильтры;
кристаллический фиолетовый [6];
литий хлористый, гексагидрат [4];
триптон;
экстракт дрожжевой [3] или
экстракт дрожжевой, очищенный [7];
экстракт мясной;
яйца куриные пищевые по ГОСТ 27583;
витаминный препарат "ЭКД" сухой [11].
3.2 Питательные среды
3.2.1 Гидролизованное и стерильное обезжиренное молоко по ГОСТ 10444.11 (3.3.1 и 3.3.3).
3.2.2 Среды питательные сухие для определения Staphylococcus aureus [9] или питательный агар для культивирования микроорганизмов сухой и питательный агар сухой II, выпускаемые Дагестанским НПО "Питательные среды" [10].
3.2.3 Желточную эмульсию готовят следующим образом
3.2.4 Солевой бульон*:
________________
* Допускается применение солевого бульона [9], который готовится согласно указанию на этикетке.
Состав: натрий хлористый (NaCl) - 7,5 г;
питательный сухой бульон - 1,5 г;
Разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при температуре (121±1) °С в течение (10±1) мин.
3.2.5 Желточно-солевой агар*
________________
* Допускается использовать солевой агар [9], который готовится согласно указанию на этикетке и к которому после стерилизации добавляется желточная эмульсия или обезжиренное молоко.
Состав: питательный агар*
для культивирования микроорганизмов (на основе гидролизата кильки) [10] - 35 г
или
питательный агар II*
(на основе гидролизата кормовых дрожжей) [10] - 24 г;
натрий хлористый (NaCl) - 75 г;
________________
3.2.6 Молочно-солевой агар*
________________
* Допускается использовать солевой агар [9], который готовится согласно указанию на этикетке и к которому после стерилизации добавляется желточная эмульсия или обезжиренное молоко.
Состав: питательный агар* для культивирования микроорганизмов (на основе гидролизата кильки) [10] - 35 г
или питательный агар II* (на основе гидролизата кормовых дрожжей) [10] - 24,0 г;
натрий хлористый (NaCl) - 75,0 г;
________________
3.2.7 Агар Байрд-Паркера*
_________________
* Допускается использовать агар Байрд-Паркера [9]. Среда готовится согласно указанию на этикетке.
Состав. Основа среды:
триптон - 10,0 г;
дрожжевой экстракт [3] - 1,0 г;
мясной экстракт - 5,0 г;
литий хлористый, гексагидрат [4] - 5,0 г;
агар - 12,0-20,0 г;
Раствор пирувата натрия:
пируват натрия [8] - 20,0 г;
Раствор глицина:
глицин [1] - 20,0 г;
При отсутствии триптона применяют гидролизат казеиновый сухой, а при отсутствии дрожжевого экстракта применяют витаминный препарат "ЭКД" сухой [11].
Готовую основу среды хранят не более 30 сут при температуре (6±2) °С.
Допускается растворы глицина, пирувата натрия, теллурита калия и желточную эмульсию готовить в асептических условиях на стерильной дистиллированной воде.
После тщательного перемешивания приготовленную среду разливают в чашки Петри.
Чашки со средой можно хранить не более 48 ч.
4 ПОРЯДОК ПОДГОТОВКИ К ПРОВЕДЕНИЮ КОНТРОЛЯ
4.1 Приготовление растворов и реактивов
4.1.1 Раствор плазмы кроличьей цитратной готовится согласно инструкции по применению плазмы, прилагаемой к упаковке.
4.1.2 Растворы и реактивы для окраски препаратов готовят по ГОСТ 9225.
4.1.3 Приготовление реактивов для окраски по Граму
4.1.3.1 Приготовление реактива 1
4.1.3.2 Приготовление реактива 2
Йодистый калий растворяют в спирте на водяной бане при температуре (45±5) °С при постоянном помешивании.
4.2 Отбор и подготовка проб
по ГОСТ 9225.
5 ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ КОНТРОЛЯ
5.1 Метод определения количества Staphylococcus aureus с предварительным обогащением
5.1.1 Подготовка и проведение контроля
5.1.1.1 Из навески продукта готовят ряд десятикратных разведений по ГОСТ 9225 так, чтобы можно было определить наличие или отсутствие Staphylococcus aureus в определенной массе (объеме), указанной в нормативном документе на конкретный продукт.
Соотношение между количеством высеваемого продукта или его эквивалентным разведением и питательной средой 1:10.
Пробирки и колбочки с посевами выдерживают в термостате при температуре (37±1) °С в течение 24 ч.
5.1.1.3 Для подтверждения принадлежности микроорганизмов, выросших на солевом бульоне, к Staphylococcus aureus делают пересев петлей из бульона для получения изолированных колоний на чашки Петри с подсушенными средами типа Байрд-Паркера (3.2.7), желточно-солевой агар или молочно-солевой агар (3.2.5; 3.2.6).
Чашки с посевами выдерживают в термостате при температуре (37±1) °С в течение 24-48 ч.
5.1.1.4 После термостатирования посевы просматривают и отмечают рост характерных колоний.
На желточно-солевом агаре колонии Staphylococcus aureus имеют форму плоских дисков диаметром 2-4 мм белого, желтого, кремового, лимонного, золотистого цвета с ровными краями; вокруг колоний образуется радужное кольцо и зона помутнения среды.
На молочно-солевом агаре колонии Staphylococcus aureus растут в виде непрозрачных круглых колоний, окрашенных от белого до оранжевого цвета, диаметром 2-4 мм, слегка выпуклых.
На среде Байрд-Паркера колонии Staphylococcus aureus растут в виде черных, блестящих, выпуклых колоний диаметром 1-1,5 мм, окруженных зоной просветления среды шириной 1-3 мм.
5.1.1.5 С каждой чашки Петри отбирают не менее пяти характерных колоний и пересеивают на поверхность скошенного питательного агара, как указано в 3.2.5, но без добавления хлористого натрия и желточной эмульсии.
Посевы выдерживают в термостате при температуре (37±1) °С в течение 24 ч.
У выросших колоний определяют отношение к окраске по Граму и коагулированию плазмы кролика.
5.1.1.6 Из пяти изолированных, характерных для Staphylococcus aureus колоний, делают препараты, окрашивают по Граму и микроскопируют.
Препарат ополаскивают водой и тщательно просушивают фильтровальной бумагой.
После просушивания на препарат наносят с избытком реактив 2, приготовленный по 4.1.3.2 так, чтобы жидкость покрыла всю поверхность стекла. Продолжительность окрашивания 0,5-1 мин. После окрашивания препарат быстро ополаскивают проточной водой, направляя струю под углом на стекло, помещенное вертикально. Препарат просушивают фильтровальной бумагой и просматривают под микроскопом с иммерсионной системой. Микробы, красящиеся по Граму, будут темно-фиолетового цвета, не красящиеся по Граму - красного цвета.
Стафилококки окрашиваются по Граму положительно (темно-фиолетового цвета), имеют шарообразную форму и располагаются скоплениями, чаще всего напоминающими гроздья винограда.
5.1.1.7 Постановка реакции плазмокоагуляции
При определении коагулазной активности реакцию считают отрицательной в тех случаях, когда в плазме не образуются отдельные нити или сгустки, или в тех случаях, когда в плазме появились отдельные нити (реакцию плазмокоагуляции оценивают на один плюс).
Реакцию считают положительной, если:
++++ - сгусток плотный;
+++ - сгусток, имеющий небольшой отсек;
++ - сгусток в виде взвешенного мешочка.
Все три варианта являются положительным результатом.
При получении положительной реакции считают, что в посевах обнаружен Staphylococcus aureus.
5.1.2. Обработка результатов контроля
Результаты оценивают по каждой пробе отдельно.
5.1.3. Оформление результатов контроля
Морфологические, культуральные свойства и положительная реакция плазмокоагуляции свидетельствуют о присутствии коагулазоположительных стафилококков в засеянной массе продукта.
5.2 Метод определения количества Staphylococcus aureus без предварительного обогащения
5.2.1 Проведение контроля
5.2.1.2 После термостатирования подсчитывают количество характерных колоний на каждой чашке Петри (5.1.4). С каждой чашки Петри отбирают не менее пяти характерных и/или подозрительных колоний Staphylococcus aureus, а в случае роста менее пяти - все колонии характерные для Staphylococcus aureus и пересевают на поверхность скошенного питательного агара, разлитого в пробирки, как указано в 3.2.5, но без добавления хлористого натрия и желточной эмульсии. Пробирки с посевами выдерживают в термостате при температуре (37±1) °С в течение 24 ч.
У выросших культур определяют отношение к окраске по Граму и коагулированию плазмы кролика в соответствии с требованиями 5.1.6 и 5.1.7.
5.2.2 Обработка результатов контроля
Результаты оценивают по каждой пробе отдельно.
Если при изучении характерных колоний в 80% случаев, то есть не менее чем в 4 из 5 колоний подтвержден рост Staphylococcus aureus, то считают, что все характерные колонии, выросшие на чашках Петри (5.1.7), принадлежат к Staphylococcus aureus. В остальных случаях количество Staphylococcus aureus определяют, исходя из процентного отношения подтвержденных колоний к общему количеству характерных колоний, взятых для подтверждения.
5.2.3 Оформление результатов контроля
Пример:
Подсчитываем количество колоний Staphylococcus aureus, выросших на трех засеянных чашках при посевах продукта или его разведений:
ПРИЛОЖЕНИЕ А
(справочное)
БИБЛИОГРАФИЯ
[1] - | ТУ 6-09-09-200-84* | Глицин для медицинских целей |
| ||
[2] - | ТУ 6-09-2060-77 | Калий теллуристокислый водный |
[3] - | ТУ 6-09-3462-73 | Экстракт дрожжевой. Технические условия |
[4] - | ТУ 6-09-3751-83 | Литий хлорид 1-водный. Технические условия |
[5] - | ТУ 6-09-3804-82 | Фуксин основной для микробиологических целей. Технические условия
|
[6] - | ТУ 6-09-4119-75 | Кристаллический фиолетовый. Технические условия |
[7] - | ТУ 6-09-4510-77 | Экстракт дрожжевой очищенный. Технические условия |
[8] - | ТУ 6-09-08-990-75 | Натрий пировинограднокислый. Технические условия |
[9] - | ТУ 10-02-02-789-176-94 | Среды питательные сухие для определения Staphylococcus aureus. Технические условия |
[10] | ОКП 93 8511 0197 ФС 42-188* ВС-88 | Питательный агар для культивирования микроорганизмов сухой и питательный агар сухой II, выпускаемые Дагестанским НПО "Питательные среды" |
[11] | ОКП 93 85630197 ФС 42386* ВС-91 | Витаминный препарат "ЭКД" сухой |
| ||
________________________________________________________________________________
УДК 623.001.4:006.354 МКС 07.100.30 Н19 ОКСТУ 9209
Ключевые слова: питательные среды, коагулазоположительные среды, характерные колонии, окраска по Граму, коагулирование плазмы
________________________________________________________________________________