ГОСТ Р ЕН 15829-2011 Продукты пищевые. Определение охратоксина А в коринке, изюме, кишмише, смесях сушеных фруктов и инжире сушеном. Метод высокоэффективной жидкостной хроматографии с применением иммуноаффинной колоночной очистки экстракта и детектирования по флюоресценции.
ГОСТ Р ЕН 15829-2011
НАЦИОНАЛЬНЫЙ СТАНДАРТ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
ПРОДУКТЫ ПИЩЕВЫЕ
Определение охратоксина А в коринке, изюме, кишмише, смесях сушеных фруктов и инжире сушеном. Метод высокоэффективной жидкостной хроматографии с применением иммуноаффинной колоночной очистки экстракта и детектирования по флюоресценции
Foodstuffs. Determination of ochratoxin A in currants, raisins, sultanas, mixed dried fruit and dried figs. High performance liquid chromatographic (HPLC) method with immunoaffinity column cleanup and fluorescence detection
ОКС 67.050
67.080.10
Дата введения 2013-01-01
Предисловие
1 ПОДГОТОВЛЕН Государственным научным учреждением "Всероссийский научно-исследовательский институт консервной и овощесушильной промышленности" Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИКОП Россельхозакадемии) на основе собственного перевода на русский язык англоязычной версии стандарта, указанного в пункте 4
2 ВНЕСЕН Техническим комитетом по стандартизации ТК 335 "Методы испытаний агропромышленной продукции на безопасность"
3 УТВЕРЖДЕН И ВВЕДЕН В ДЕЙСТВИЕ Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 17 октября 2011 г. N 457-ст
4 Настоящий стандарт идентичен европейскому стандарту ЕН 15829:2010* "Продукты пищевые. Определение охратоксина А в коринке, изюме, кишмише, смешанных сушеных фруктах и инжире сушеном. Метод ВЭЖХ с применением иммуноаффинной колоночной очистки экстракта и детектирования по флюоресценции" (EN 15829:2010 "Foodstuffs - Determination of ochratoxin A in currants, raisins, sultanas, mixed dried fruit and dried figs - HPLC method with immunoaffinity column cleanup and fluorescence detection", IDT).
При применении настоящего стандарта рекомендуется использовать вместо ссылочного стандарта соответствующий ему национальный стандарт, сведения о котором приведены в дополнительном приложении ДА
5 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ
6 ПЕРЕИЗДАНИЕ. Октябрь 2019 г.
Правила применения настоящего стандарта установлены в статье 26 Федерального закона от 29 июня 2015 г. N 162-ФЗ "О стандартизации в Российской Федерации". Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном (по состоянию на 1 января текущего года) информационном указателе "Национальные стандарты", а официальный текст изменений и поправок - в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ближайшем выпуске ежемесячного информационного указателя "Национальные стандарты". Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет (www.gost.ru)
1 Область применения
Настоящий стандарт устанавливает метод определения охратоксина А в коринке, изюме, кишмише, смесях сушеных фруктов и сушеном инжире с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с применением очистки экстракта на колонке с иммуноаффинным сорбентом и детектированием по флюоресценции. Метод прошел валидацию путем межлабораторных испытаний проб, загрязненных охратоксином А естественным и искусственным образом в диапазоне содержания от 1,1 до 11 мг/кг.
Подробная информация о валидации метода приведена в разделе 9 и в приложении В.
ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ - Применение настоящего стандарта предусматривает использование опасных веществ, материалов, процедур и оборудования. В задачи настоящего стандарта не входит решение проблем, связанных с обеспечением безопасности при его применении. Ответственность за принятие надлежащих мер предосторожности и соблюдение правил техники безопасности лежит на пользователе настоящего стандарта.
2 Нормативные ссылки
В настоящем стандарте использована нормативная ссылка на следующий стандарт. Для датированных ссылок применяют только указанное издание ссылочного стандарта, для недатированных - последнее издание (включая все изменения).
EN ISO 3696, Water for analytical laboratory use - Specifications and test methods (Вода для лабораторного анализа. Технические требования и методы испытаний)
3 Сущность метода
Анализируемую пробу экстрагируют смесью метанола и фосфорной кислоты. Экстракт фильтруют, разбавляют фосфатно-хлоридным буферным раствором и пропускают через колонку, заполненную иммуноаффинным сорбентом, содержащим антитела, специфичные к охратоксину А. При этом происходит сорбция, очистка и концентрирование охратоксина А, после чего охратоксин А элюируют с колонки. Количественное определение охратоксина А проводят с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии с применением аналитической колонки с обращенно-фазовым сорбентом и детектирования по флюоресценции.
4 Реактивы
4.1 Общие положения
Для проведения анализа при отсутствии особо оговоренных условий используют только реактивы гарантированной аналитической чистоты и воду не ниже первой степени чистоты по ЕН ИСО 3696. Используемые растворители по степени чистоты должны быть пригодны для применения в анализе с помощью ВЭЖХ. Допускается использование готовых растворов при условии, что их характеристики не отличаются от приведенных ниже.
ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ - Утилизацию отработанных растворителей проводят в соответствии с требованиями законодательства по охране окружающей среды. Способы обезвреживания отработанных реактивов приведены в материалах Международного агентства по исследованию рака (IARC) [1].
4.2 Гелий газообразный очищенный сжатый.
4.4 Калий хлористый.
4.5 Калий фосфорнокислый однозамещенный.
4.6 Натрий хлористый.
4.7 Натрия гидроксид.
Раствор готовят в день использования.
4.9 Кислота соляная, раствор массовой долей w (HCI)=37%.
4.13 Раствор фосфатно-хлоридный буферный
4.14 Ацетонитрил.
ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ - Ацетонитрил является токсичным веществом, поэтому все операции по приготовлению растворов, содержащих ацетонитрил, следует проводить в вытяжном шкафу с использованием взрывобезопасного перемешивающего устройства. Фильтрование растворов, содержащих ацетонитрил, проводят также в вытяжном шкафу.
4.16 Метанол.
4.17 Толуол.
4.18 Растворитель для инжекций
Смешивают воду, ацетонитрил по 4.14 и уксусную кислоту по 4.15 в объемном соотношении 80:20:2.
4.19 Подвижная фаза для ВЭЖХ
Смешивают воду, ацетонитрил по 4.14 и ледяную уксусную кислоту по 4.15 в объемном соотношении 99:99:2. Полученную подвижную фазу дегазируют, например, с использованием гелия по 4.2.
4.20 Смешанный раствор толуола и уксусной кислоты
Смешивают толуол по 4.17 с ледяной уксусной кислотой по 4.15 в объемном соотношении 99:1.
4.21 Колонка с иммуноаффинным сорбентом
Колонка с иммуноаффинным сорбентом содержит антитела, специфичные в отношении охратоксина А. Для проведения испытания пригодна колонка сорбционной емкостью по отношению к охратоксину А не менее 100 нг, обеспечивающая открываемость не менее 70% при внесении в нее 5 нг охратоксина А в растворе, состоящем из ацетонитрила по 4.14 и фосфатно-хлоридного буферного раствора по 4.13 в объемном соотношении 5:95.
4.22 Силанизирующий раствор для обработки внутренней поверхности лабораторной посуды (применяется по выбору пользователя)
Смешивают силанизирующий реактив с толуолом по 4.17 в объемном соотношении 1:19.
4.23 Охратоксин А, ампульный препарат в кристаллической или пленочной форме.
4.24 Охратоксин А, основной стандартный раствор
ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ - Охратоксин А является сильным нефротоксином с иммунотоксическими, тератогенными и, предположительно, генотоксическими свойствами. Международное агентство по исследованию рака характеризует охратоксин А как потенциальный канцероген для человека (группа 2В). Все работы, связанные с подготовкой пробы и приготовлением стандартных растворов, должны проводиться в вытяжном шкафу с использованием защитной одежды, перчаток и защитных очков.
Основной раствор хранят при температуре около минус 18°С. Перед использованием раствор выдерживают до достижения комнатной температуры. При указанных условиях хранения срок годности раствора составляет 12 мес. При хранении основного раствора более 6 мес перед его использованием проверяют соответствие фактической массовой концентрации охратоксина А ранее установленному значению.
4.25 Стандартный раствор охратоксина А промежуточной массовой концентрации для искусственного загрязнения проб при контроле полноты обнаружения
Полученный раствор хранят при температуре около минус 18°С. Перед использованием раствор выдерживают до достижения комнатной температуры. При указанных условиях хранения срок годности раствора составляет 12 мес. При хранении основного раствора более 6 мес перед его использованием проверяют соответствие фактической массовой концентрации охратоксина А ранее установленному значению.
4.26 Стандартный раствор охратоксина А
Раствор хранят при температуре около минус 18°С. Перед использованием раствор выдерживают до достижения комнатной температуры. При указанных условиях хранения срок годности раствора составляет 6 мес.
5 Аппаратура
5.1 Общие положения
При проведении испытания используют общеупотребительные лабораторную посуду и оборудование, в частности, перечисленные ниже.
5.2 Стеклянные флаконы с силанизированной внутренней поверхностью (применяются по выбору пользователя)
Для подготовки флаконов их заполняют силанизирующим раствором по 4.22 и выдерживают в течение 1 мин. Далее флаконы промывают, используя сначала слабополярный растворитель, например толуол по 4.17, затем метанол по 4.16. Перед использованием флаконы высушивают.
Примечание - Применение силанизированной лабораторной посуды позволяет исключить возможность сорбции охратоксина А на стекле во время выпаривания раствора.
5.3 Блендер высокоскоростной или гомогенизатор.
5.4 Весы аналитические, пригодные для взвешивания с точностью до 0,0001 г.
5.5 Весы лабораторные, пригодные для взвешивания с точностью до 0,1 г.
5.7 Устройство для вакуумной фильтрации многопозиционное, приспособленное для установки иммуноаффинных колонок (манифолд).
5.8 Резервуары и приспособления для установки иммуноаффинных колонок.
5.10 Бумага фильтровальная с размером диаметра пор от 20 до 25 мкм.
5.11 Система для высокоэффективной жидкостной хроматографии в указанной ниже комплектации
5.11.3 Термостат колонок (применяется по выбору пользователя), обеспечивающий постоянную температуру колонок независимо от колебаний температуры в лабораторном помещении (например, 45°С с точностью установки ±1°С и точностью поддержания заданной температуры ±0,5°С).
5.11.4 Колонка для ВЭЖХ аналитическая длиной 25 см, внутренним диаметром 4,6 мм, заполненная обращенно-фазовым сорбентом, например, с привитыми октадецильными группами (ODS) диаметром частиц 5 мкм, обеспечивающая отделение пика охратоксина А от сопутствующих пиков. Перекрывание пика охратоксина А другими пиками не должно превышать 10% его высоты. При необходимости для достижения приемлемой степени разделения пиков изменяют состав подвижной фазы. Для предотвращения потери работоспособности аналитической колонки рекомендуется использовать предколонку, заполненную обращенно-фазовым сорбентом.
5.11.5 Дегазатор (применяется по выбору пользователя).
5.11.6 Детектор флюоориметрический, снабженный проточной кюветой, позволяющий проводить измерения при длинах волн возбуждения и испускания соответственно 333 и 477 нм или, в случае использования системы послеколоночной дериватизации, соответственно 390 и 440 нм.
5.11.7 Самописец, интегратор или компьютерная система обработки данных.
5.12 Спектрофотометр, пригодный для измерений оптической плотности в ультрафиолетовой области спектра.
6 Процедура проведения испытания
6.1 Приготовление суспензии пробы
Измеряют массу лабораторной пробы. Для облегчения последующей гомогенизации рекомендуется предварительно измельчить лабораторную пробу до пастообразного состояния. К лабораторной пробе добавляют воду в соотношении 5:4 (по массе). Полученную смесь гомогенизируют не менее 30 мин или до получения массы однородной консистенции.
В случае, если суспендированная проба хранилась в замороженном состоянии, перед взятием порции пробы для анализа ее полностью размораживают и тщательно перемешивают.
6.2 Экстракция
6.3 Очистка экстракта на колонке с иммуноаффинным сорбентом
Колоночную очистку экстракта можно проводить как с применением разрежения, так и путем создания давления на входе в колонку, а также путем пропускания определенных объемов экстракта и элюента через колонку под действием силы тяжести. Необходимо следить, чтобы скорость протока при этом не превышала оговоренного для данной колонки предельно допустимого значения. В данном отношении особое внимание требуется проявлять при работе с вакуумным манифолдом.
Примечание - При проведении очистки экстракта следует обращать внимание на то, чтобы сорбционная емкость колонки не была превышена.
6.4 Приготовление раствора пробы для хроматографического анализа
Процедуры очистки экстракта и подготовки раствора пробы к хроматографическому анализу допускается проводить с использованием автоматизированной системы, например автоматизированной системы очистки методом твердофазной экстракции (ASPEC) при условии соблюдения всех параметров, оговоренных в настоящей методике, в частности, объемов разведения и скорости элюирования.
6.5 Приготовление раствора пробы с добавкой охратоксина А для контроля полноты обнаружения
7 Анализ с помощью ВЭЖХ
7.1 Условия хроматографического анализа
Приведенные ниже параметры обеспечивают удовлетворительное качество хроматографического анализа при использовании колонки по 5.11.4 и подвижной фазы по 4.19. При этом время удерживания пика охратоксина А находится в интервале от 9 до 10 мин.
- длина волны эмиссии флюориметрического детектора: 477 нм;
- длина волны возбуждения флюориметрического детектора: 333 нм;
7.2 Условия послеколоночной дериватизации (применяется по выбору пользователя)
Применение послеколоночной дериватизации позволяет повысить чувствительность и снизить предел обнаружения охратоксина А. Для некоторых видов проб данный прием позволяет уменьшить помехи, вносимые присутствием на хроматограмме пиков других веществ из матрицы пробы. Послеколоночная дериватизация может быть использована для подтверждения идентичности пика охратоксина А на хроматограмме раствора пробы. Приведенные ниже параметры обеспечивают увеличение чувствительности определения охратоксина А в 3-4 раза при условии использования системы послеколоночной дериватизации по 5.11.8 и колонки по 5.11.4:
- длина волны эмиссии флюориметрического детектора: 440 нм;
- длина волны возбуждения флюориметрического детектора: 390 нм;
- размеры капилляра, используемого в качестве послеколоночного реактора: длина 1500 мм, размер внутреннего диаметра 0,25 мм;
Примечание 1 - Необходимо, чтобы значение рН элюента на выходе из детектора находилось в щелочной области (типичное значение рН около 9). Значение рН элюента контролируют с использованием индикаторной бумаги.
Примечание 2 - Следует принимать меры по предотвращению распространения паров аммиака в воздухе, например, поместив в резервуар для сбора элюата насыщенный раствор лимонной кислоты.
7.3 Приготовление градуировочных растворов
Таблица 1 - Приготовление градуировочных растворов
|
|
|
|
Градуировочный раствор | Объем растворителя для инжекций по 4.18, используемый для приготовления градуировочного раствора, мм | Объем стандартного раствора по 4.26, используемый для приготовления градуировочного раствора, мм | Массовая концентрация охратоксина А в градуировочном растворе, нг/см |
1 | 4960 | 40 | 2,0 |
2 | 4900 | 100 | 5,0 |
3 | 4840 | 160 | 8,0 |
4 | 4800 | 200 | 10,0 |
Примечание - Если массовая концентрация охратоксина А в анализируемом растворе пробы превышает верхнюю границу диапазона градуировки, допускается построение градуировочного графика в другом диапазоне массовых концентраций охратоксина А. В качестве альтернативы раствор пробы для хроматографического анализа разбавляют до получения в нем массовой концентрации охратоксина А, находящейся в пределах диапазона градуировки.
7.4 Градуировочный график
7.5 Определение охратоксина А в растворе пробы
Проводят хроматографический анализ растворов проб по 6.4 при тех же условиях, что были использованы при анализе градуировочных растворов.
7.6 Идентификация пиков
Пик охратоксина А на хроматограмме раствора пробы идентифицируют по совпадению его времени удерживания с временем удерживания охратоксина А на хроматограммах градуировочных растворов. Необходимо, чтобы массовая концентрация охратоксина А в растворе пробы находилась в границах диапазона градуировки. Если массовая концентрация охратоксина А в растворе пробы превышает верхнюю границу диапазона градуировки, допускается построение градуировочного графика в другом диапазоне. В качестве альтернативы раствор пробы для хроматографического анализа разбавляют до получения в нем массовой концентрации охратоксина А в пределах диапазона градуировки. При этом во всех последующих расчетах необходимо учитывать коэффициент разбавления.
8 Обработка результатов
9 Презиционность
9.1 Общие положения
Подробности межлабораторных испытаний по определению прецизионности метода приведены в таблице В.1. Значения метрологических характеристик, полученные в результате межлабораторных испытаний, могут быть не применимы к другим содержаниям аналита и другим типам матриц, чем те, что указаны в приложении В.
9.2 Повторяемость
Значения предела повторяемости равны:
9.3 Воспроизводимость
Значения предела воспроизводимости равны:
10 Протокол результатов испытаний
Протокол результатов испытаний должен содержать как минимум следующие сведения:
a) всю информацию, необходимую для идентификации пробы;
b) ссылку на настоящий стандарт или использованный метод;
c) дату и время отбора пробы (если известны);
d) дату поступления пробы в лабораторию;
e) дату проведения испытания;
f) результаты испытания с указанием единиц измерения;
g) все особенности, наблюдавшиеся при проведении испытания;
h) все операции, не оговоренные в методике или рассматриваемые как необязательные, которые могли повлиять на результат испытания.
Приложение А
(справочное)
Типичная хроматограмма
|
Рисунок А.1 - Типичная хроматограмма изюма с содержанием охратоксина А около 9 мкг/кг
Приложение В
(справочное)
Данные по прецизионности методики
Приведенные ниже данные получены в результате межлабораторных испытаний [3] в соответствии с Руководством АОАС по проведению межлабораторных испытаний для валидации методов анализа [4].
Таблица В.1 - Данные по прецизионности методики
|
|
|
|
|
|
Показатель | Коринка | Кишмиш | Смесь сушеных фруктов | Изюм | Инжир сушеный |
Год проведения испытаний | 2002 | 2002 | 2002 | 2002 | 2002 |
Количество лабораторий-участников | 20 | 24 | 24 | 24 | 24 |
Количество лабораторий, оставшихся после исключения выбросов | 20 | 22 | 20 | 21 | 22 |
Количество выбросов (лабораторий) | 0 | 2 | 4 | 3 | 2 |
Число принятых результатов | 20 | 22 | 20 | 21 | 22 |
Среднее значение , мкг/кг | 4,51 | 11,39 | 1,14 | 7,55 | 2,55 |
Стандартное отклонение повторяемости , мкг/кг | 0,26 | 0,64 | 0,10 | 0,37 | 0,22 |
Относительное стандартное отклонение повторяемости , % | 5,7 | 5,6 | 8,6 | 4,9 | 8,7 |
Предел повторяемости , мкг/кг | 0,73 | 1,79 | 0,27 | 1,04 | 0,62 |
Стандартное отклонение воспроизводимости , мкг/кг | 1,28 | 1,63 | 0,16 | 1,05 | 0,46 |
Относительное стандартное отклонение воспроизводимости , % | 28,4 | 14,3 | 14,2 | 14,0 | 18,0 |
Предел воспроизводимости , мкг/кг · | 3,59 | 4,55 | 0,45 | 2,95 | 1,28 |
Полнота обнаружения, % |
| 72 | 72 | 73 | 74 |
Значение индекса Горвица, рассчитанное по прогнозируемому стандартному отклонению с использованием уравнения Томпсона ( ) [5] и [6] | 1,3 | 0,7 | 0,6 | 0,6 | 0,8 |
Значения полноты обнаружения найдены для каждой матрицы по результатам анализов единичного образца с искусственным внесением охратоксина А на уровне 5 мкг/кг, выполненных каждой лабораторией - участником межлабраторных испытаний.
|
Приложение ДА
(справочное)
Сведения о соответствии ссылочного европейского стандарта национальному стандарту
Таблица ДА.1
|
|
|
Обозначение ссылочного европейского стандарта | Степень соответствия | Обозначение и наименование соответствующего национального стандарта |
EN ISO 3696 | MOD | ГОСТ Р 52501-2005 (ИСО 3696:1987) "Вода для лабораторного анализа. Технические условия" |
Примечание - В настоящей таблице использовано следующее условное обозначение степени соответствия стандартов:
- MOD - модифицированный стандарт.
|
Библиография
|
|
[1] | Castegnaro М., Barek J., Fremy J.М., Lafontaine М., Sansone Е.В. and Telling G.M. Laboratory decontamination and destruction of carcinogens in laboratory wastes: some mycotoxins. IARC Scientific Publication No. 113, International Agency for Research on Cancer, Lyon (France), 1991, pp.63 |
[2] | Wood G.M., Patel S., Entwisle A.С. and Boenke A., 1996, Ochratoxin A in wheat: a second intercomparison of procedures, Food Additives and Contaminants, 13, pp.519-539 |
[3] | MacDonalds S.J., Anderson S., Brereton P., and Wood R. (2003). Determination of Ochratoxin A in currants, raisins, sultanas, mixed dried fruit, and frigs by immunoaffinity column cleanup with liquid chromatography: interlaboratory Study, Journal of AOAC International., 86, pp.1164-1171 |
[4] | AOAC International 1995, AOAC official Methods Program, Associate Referee’s Manual on Development, Study, Review, and Approval Process. Part IV AOAC Guidelines for Collaborative Studies, pp.23-51 |
[5] | Horwitz, W. and Albert, R., (2006), The Horwitz Ratio (HorRat): A Useful Index of Method Performance with Respect to Precision, Journal of AOAC International, 89, pp.1095-1109 |
[6] | Thompson, M., 2000, Recent trends in inter-laboratory precision at ppb and sub-ppb concentrations in relation to fitness for purpose criteria in proficiency testing, Analyst, 125, pp.385-386 |
|
|
УДК 663/664:543:544.53:006.354 | OKC 67.050 67.080.10 |
Ключевые слова: продукты пищевые, определение охратоксина А, коринка, кишмиш, смеси сушеных фруктов, инжир сушеный, метод высокоэффективной жидкостной хроматографии, обработка результатов, прецизионность |