ГОСТ ИСО 21571-2009 Продукты пищевые. Методы анализа для обнаружения генетически модифицированных организмов и производных продуктов. Экстрагирование нуклеиновых кислот.
ГОСТ ИСО 21571-2009
МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ
ПРОДУКТЫ ПИЩЕВЫЕ
Методы анализа для обнаружения генетически модифицированных организмов и производных продуктов. Экстрагирование нуклеиновых кислот
Foodstuffs. Methods of analysis for the detection of genetically modified organisms and derived products. Nucleic acid extraction
МКС 67.050
Дата введения*
Предисловие
Евразийский совет по стандартизации, метрологии и сертификации (ЕАСС) представляет собой региональное объединение национальных органов по стандартизации государств, входящих в Содружество Независимых Государств. В дальнейшем возможно вступление в ЕАСС национальных органов по стандартизации других государств.
Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стандартизации установлены ГОСТ 1.0-92 "Межгосударственная система стандартизации. Основные положения" и ГОСТ 1.2-2009 "Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные, правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Порядок разработки, принятия, применения, обновления и отмены".
Сведения о стандарте
1 ПОДГОТОВЛЕН республиканским унитарным предприятием "Белорусский государственный институт метрологии" (БелГИМ) на основе собственного аутентичного перевода стандарта, указанного в пункте 4
2 ВНЕСЕН Государственным комитетом по стандартизации Республики Беларусь
3 ПРИНЯТ Евразийским советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол N 36-2009 от 11 ноября 2009 г.)
За принятие проголосовали:
Краткое наименование страны по МК (ИСО 3166) 004-97 | Код страны по МК (ИСО 3166) 004-97 | Сокращенное наименование национального органа по стандартизации |
Армения | AM | Минэкономики Республики Армения |
Беларусь | BY | Госстандарт Республики Беларусь |
Казахстан | KZ | Госстандарт Республики Казахстан |
Кыргызстан | KG | Кыргызстандарт |
Молдова | MD | Молдова-Стандарт |
Российская Федерация | RU | Росстандарт |
Таджикистан | TJ | Таджикстандарт |
Узбекистан | UZ | Узстандарт |
4 Настоящий стандарт идентичен международному стандарту ISO 21571:2005* Foodstuffs - Methods of analysis for the detection of genetically modified organisms and derived products - Nucleic acid extraction (Продукты пищевые. Методы анализа для обнаружения генетически модифицированных организмов и производных продуктов. Экстрагирование нуклеиновых кислот).
Международный стандарт разработан CEN/TC 275 "Анализ пищевых продуктов. Горизонтальные методы" Европейского комитета по стандартизации (CEN) совместно с ISO/TC 34 "Пищевые продукты" Международной организации по стандартизации (ISO) в соответствии с Соглашением о техническом сотрудничестве между ISO и CEN (Венским соглашением).
Перевод с английского языка (en).
В разделе "Нормативные ссылки" и тексте стандарта ссылки на международные стандарты актуализированы.
Степень соответствия - идентичная (IDT)
5 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ
Информация о введении в действие (прекращении действия) настоящего стандарта и изменений к нему на территории указанных выше государств публикуется в указателях национальных (государственных) стандартов, издаваемых в этих государствах, а также в сети Интернет на сайтах соответствующих национальных органов по стандартизации
В случае пересмотра, изменения или отмены настоящего стандарта соответствующая информация также будет опубликована в сети Интернет на сайте Межгосударственного совета по стандартизации, метрологии и сертификации в каталоге "Межгосударственные стандарты"
Зарегистрирован N 6009 7 сентября 2010 г.
Введение
Исследование генетически модифицированных организмов (далее - ГМО) и производных продуктов осуществляется посредством следующих стадий, выполняемых последовательно или одновременно. После отбора проб нуклеиновые кислоты экстрагируются из навески пробы. Экстрагированные нуклеиновые кислоты далее могут быть очищены в процессе экстрагирования или после него. Следующими этапами являются: оценка количества экстрагированных нуклеиновых кислот (при необходимости), разведение нуклеиновых кислот (при необходимости) и выполнение аналитических процедур, например полимеразной цепной реакции (далее - ПЦР). Указанные этапы подробно изложены в настоящем стандарте и следующих международных стандартах:
- ISO 21568 "Продукты пищевые. Методы анализа для обнаружения генетически модифицированных организмов и производных продуктов. Отбор проб";
- ISO 21569 "Продукты пищевые. Методы анализа на обнаружение генетически модифицированных организмов и их производных продуктов. Качественные методы, основанные на нуклеиновой кислоте";
- ISO 21570 "Продукты пищевые. Методы анализа на обнаружение генетически модифицированных организмов и их производных продуктов. Количественные методы, основанные на нуклеиновой кислоте".
Дополнительная информация об общих требованиях и определениях, относящихся к упомянутым выше этапам, приведена в ISO 24276 "Продукты пищевые. Методы анализа для обнаружения генетически модифицированных организмов и производных продуктов. Общие требования и определения".
1 Область применения
Настоящий стандарт устанавливает общие требования и специфические методы экстрагирования, очистки и количественной оценки дезоксирибонуклеиновой кислоты (далее - ДНК). Эти методы изложены в приложениях А и В.
Настоящий стандарт разработан для пищевых матриц, но может быть также применен к другим матрицам, например зерновым культурам и кормам.
Настоящий стандарт следует применять совместно с ISO 21569, ISO 21570 в части аналитических методов на основе нуклеиновых кислот, в частности качественных аналитических методов, установленных в ISO 21569, и количественных аналитических методов, установленных в ISO 21570.
2 Нормативные ссылки
Для применения настоящего стандарта необходимы следующие ссылочные стандарты. Для недатированных ссылок применяют последнее издание ссылочного стандарта.
ISO 24276:2006 Продукты пищевые. Методы анализа для обнаружения генетически модифицированных организмов и полученных из них продуктов. Общие требования и определения
ISO/DIS 21568:2003 Продукты пищевые. Методы анализа для обнаружения генетически модифицированных организмов и производных продуктов. Отбор проб
3 Принцип метода
3.1 Общие положения
Основной целью применения методов экстрагирования нуклеиновых кислот является обеспечение выделения нуклеиновых кислот, пригодных для последующего анализа (см. ISO 24276).
Примечание - Качество ДНК зависит от средней длины экстрагированных молекул ДНК, химической чистоты и структурной целостности одной нити и двойной спирали ДНК (например, внутри- и межцепочечные связи оснований ДНК, выпадение оснований в цепочке ДНК, перекрестные сшивки с высокомолекулярными спиртами, гемином и т.д.). Кроме того, такие структурные изменения часто являются специфичными для определенной последовательности ДНК и поэтому не распределены по геному случайным образом (см. [1]-[4]).
Пользователям настоящего стандарта необходимо иметь в виду, что некоторые методы (например, методы на основе диоксида кремния) могут быть запатентованы.
3.2 Экстрагирование ДНК
Основной принцип экстрагирования ДНК заключается в выделении ДНК, присутствующей в матрице пробы, а затем одновременной или последующей очистке ДНК от ингибиторов ПЦР.
Методы экстрагирования и очистки ДНК изложены в приложении А. Выбор метода основывается на опыте пользователя с учетом области применения и примеров матриц, которые указаны в каждом методе.
Альтернативные методы могут применяться при условии, что метод был проверен на соответствующей матрице, подлежащей исследованию.
3.3 Количественная оценка содержания ДНК
Количественная оценка экстрагированной ДНК может потребоваться для последующего анализа ПЦР.
Такая оценка может выполняться либо физическими (например, измерением поглощения на специфической длине волны), физико-химическими (например, применением интеркалирующих или связующих агентов, обладающих флюоресцентными свойствами), ферментативными (например, биолюминесцентным обнаружением) методами, либо путем количественной ПЦР. Последний метод применяется для составных и сложных матриц, проб с низким содержанием ДНК или проб, в которых ДНК подверглась деградации.
Существует несколько методов, применяемых для определения количества ДНК, присутствующей в растворе. Эти методы изложены в приложении В.
Выбор наиболее подходящего метода осуществляется пользователем в зависимости от количества и качества ДНК, подлежащей количественному определению, а также от матрицы, из которой была экстрагирована ДНК.
Альтернативные методы могут применяться при условии, что метод был проверен на соответствующей матрице.
4 Общие требования к лаборатории
Вследствие воздействия пыли и распыляемых аэрозолей может происходить случайная контаминация ДНК, поэтому организация рабочих мест в лаборатории основывается на строгом соблюдении:
- последовательности всех установленных методологических этапов, используемых для получения промежуточных и конечных результатов;
- принципа "прямого потока" при обращении с пробами.
Использование последнего принципа гарантирует, что ДНК, подлежащая анализу, и амплифицированная ДНК, полученная в результате ПЦР, остаются физически разделенными.
Дополнительные требования к лабораториям приведены в ISO 24276.
5 Методика
5.1 Приготовление пробы для анализа
5.1.1 Общие положения
Специфические параметры анализируемого продукта (например, влажность) и его обработка могут влиять на количество и качество ДНК, экстрагируемой из анализируемого продукта. В связи с этим рабочие характеристики применяемого метода экстрагирования ДНК зависят от матрицы анализируемого продукта.
Необходимо принять соответствующие меры, чтобы гарантировать, что навеска пробы является представительной лабораторной пробой.
Навеска пробы должна быть достаточного размера (объема, массы) и содержать достаточное количество частиц для обеспечения представительности лабораторной пробы (например, 3000 частиц для предела обнаружения LOD 0,1%), возможности проведения дальнейшего статистического анализа и получения статистически обоснованного вывода по результатам анализа (см. ISO/DIS 21568).
Исходя из практических и технических соображений не рекомендуется, чтобы величина навески пробы превышала 2 г.
Любые ограничения, связанные с размером навески пробы, не позволяющие рассматривать ее как представительную пробу, должны быть учтены при интерпретации аналитических результатов и указаны в протоколе испытаний.
Методы экстрагирования ДНК, приведенные в приложении А, устанавливают размер навески пробы от 200 до 500 мг, что обычно является приемлемым для продукции с высоким содержанием ДНК (твердое и дробленое зерно, мука). Однако некоторые продукты содержат очень малое количество ДНК или деградировавшую ДНК, в связи с этим указанная навеска пробы не позволит экстрагировать достаточное для анализа количество ДНК. В таких случаях размер навески пробы может быть увеличен.
Экстрагирование ДНК должно выполняться не менее чем из двух навесок пробы одной и той же продукции.
Хранение стандартов, лабораторных проб и навесок проб должно соответствовать требованиям ISO 24276 и быть организовано таким образом, чтобы анализируемые биохимические параметры были сохранены (подробнее см. ISO/IEC 17025).
5.1.2 Пробы
Все операции по приготовлению лабораторных проб (например, измельчение, гомогенизация, деление, высушивание) должны выполняться в соответствии с методиками, описанными в ISO 24276. При выполнении всех необходимых операций должны быть приняты меры предосторожности для защиты лабораторной пробы от загрязнения или изменения ее состава.
Лабораторные пробы должны быть тщательно гомогенизированы перед их сокращением и отбором навесок пробы.
В случае жидких проб необходимо встряхивать сосуд с пробой для обеспечения гомогенизации продукта. В случае негомогенных продуктов типа неочищенных масел необходимо убедиться, что осадок и все нерастворимые составляющие полностью удалены со стенок сосуда.
В случае проб с твердыми матрицами, отличающимися затрудненным измельчением, лабораторная проба должна быть измельчена для уменьшения размера частиц и/или улучшения экстрагирования ДНК. В таких случаях особое внимание необходимо обратить на размер частиц. Навеска пробы, подвергаемая экстрагированию, должна содержать минимальное количество частиц, как установлено в ISO/DIS 21568. Необходимо, чтобы оборудование, предназначенное для дробления и измельчения пробы, было легко моющимся по всей рабочей поверхности и обеспечивало требуемое количество и размер частиц (гранулометрический состав) анализируемой пробы согласно ISO/DIS 21568.
Если какие-либо компоненты лабораторной пробы были удалены до проведения экстрагирования, то это должно быть указано в протоколе испытаний с описанием проведенных операций.
Для твердых или пастообразных готовых пищевых продуктов с высоким содержанием липидов достаточно трудно достичь требуемого размера частиц за один этап измельчения. В таких случаях допускается перед измельчением применять дополнительные процедуры, такие как удаление липидов гексаном после промежуточного измельчения, замораживание или сублимационная сушка.
Для улучшения измельчения пастообразных или вязких продуктов для некоторых матриц можно использовать одну из следующих обработок:
- нагрев до максимальной температуры 40°С;
- растворение в соответствующей жидкости, например воде;
- замораживание при температуре минус 20°С или ниже.
Гомогенизировать необходимо всю лабораторную пробу. Затем необходимо отобрать две навески пробы с учетом возможного проведения в дальнейшем процедур разбавления или концентрирования.
Во время проведения процедур размола и измельчения необходимо соблюдать меры, гарантирующие поддержание нагрева лабораторной пробы на минимальном уровне и не допускающие ее сильного нагревания, так как нагрев может отрицательно воздействовать на качество экстрагируемой ДНК.
По возможности необходимо избегать способов размола/измельчения, при которых возникает высокий риск перекрестного загрязнения (например, комбинированное использование жидкого азота и ступки, а также использование одной ступки для разных образцов). Одним из основных требований является необходимость изолирования любого методологического этапа, при проведении которого происходит образование пыли, от всех других аналитических этапов и процедур.
В случае присутствия в лабораторной пробе соли, сахарной пудры, специй и/или других веществ, которые могут потенциально оказывать влияние на экстрагирование или дальнейший аналитический метод, должны быть предприняты дополнительные соответствующие процедуры очистки в соответствии с используемым методом (см. приложение А).
Например, в случае проб сложного состава материал для исследования (матрица) (например, панировочный слой рыбных палочек) может быть отделен от остальной части продукта для экстрагирования ДНК.
5.2 Экстрагирование и очистка ДНК
5.2.1 Общие положения
При разработке методов экстрагирования необходимо учитывать следующие требования.
Качество и количество экстрагируемой нуклеиновой кислоты при использовании заданного метода на заданной матрице пробы должны быть как повторяемыми, так и воспроизводимыми при условии содержания достаточного количества нуклеиновой кислоты в матрице пробы, из которой она была экстрагирована.
Для получения ДНК хорошего качества рекомендуется при необходимости удалить следующие компоненты:
- рибонуклеиновую кислоту (далее - РНК) и/или белки путем соответствующей обработки, например ферментативной обработки рибонуклеазой и протеиназой соответственно;
- липидные фракции путем, например, ферментативной обработки или использования растворителей (например, н-гексана);
- соли (например, из буфера для экстрагирования и лизиса на стадии осаждения), способные оказывать влияние на последующий анализ.
В частности, в случае твердых или высушенных проб объем буфера для экстрагирования и лизиса должен быть таким, чтобы гарантировать растворение в нем ДНК.
Примечание 1 - Очистка ДНК может выполняться различными способами, например путем фракционного осаждения с использованием таких растворителей, как фенол, хлороформ, этанол, изопропанол, и/или с использованием адсорбции на твердые матрицы (анионообменную смолу, силикагель или стеклянный гель, диатомовую землю, мембраны и т.д.). Можно объединить несколько принципов очистки ДНК. При необходимости экстрагирование и очистка могут совмещаться путем выполнения на одном и том же этапе.
В случае использования соосадителей ДНК, например гликогена, полиэтиленгликоля (ПЭГ), транспортной РНК (т-РНК), для увеличения соосаждения ДНК они не должны обладать нуклеазной активностью (содержать регистрируемый уровень нуклеаз), содержать ингибиторы и/или конкуренты ПЦР или последовательности нуклеиновых кислот, гомологичные анализируемым последовательностям. При выделении ДНК из генетически модифицированных растений в качестве соосадителя может быть использована, например, ДНК спермы лосося или сельди.
При использовании сублимационных сушилок для высушивания осадка ДНК, полученного после стадии осаждения, необходимо учитывать риск перекрестного загрязнения.
Необходимо повторно растворить ДНК в воде или буферном растворе для предотвращения деградации ДНК.
При применении нового метода экстрагирования ДНК или применении одного из методов, описанных в приложении А, для новых объектов потенциальные качество и целостность экстрагированной ДНК с использованием выбранного метода должны быть проверены следующим образом: добавлением в лизирующий буфер известного количества меченой ДНК вместе с объектом, из которого необходимо выделить ДНК. Если оценка нового метода производится на основании использования меченой ДНК, количество (масса) которой известно, или подсчета количества копий определенной последовательности ДНК, необходимо оценить возможную перекрестную реактивность такой ДНК с ДНК, содержащейся в исследуемой матрице.
Примечание 2 - Использование меченой ДНК является наилучшим приближением к реальной ситуации, когда предполагается образование комплекса ДНК данной матрицы с другими компонентами (например, белками). Такой метод также может использоваться для оценки присутствия растворимых и трансдействующих ингибиторов ПЦР в экстрагированной ДНК (см. ISO 24276, ISO 21569 и ISO 21570).
Однако меченая ДНК может привести к ложному представлению о степени извлечения ДНК, так как она может гораздо легче отделяться от матрицы, чем ДНК-мишень.
5.2.2 Процедуры контроля
Процедуры контроля, подлежащие использованию при проведении анализа, описаны в таблице 1 ISO 24276. Они должны включать как минимум отрицательный и положительный контроль экстрагирования, а также могут включать контроль окружающей среды.
5.2.3 Контроль чистоты ДНК. Внутренний контроль ПЦР
При отработке нового метода экстрагирования присутствие ингибиторов ПЦР в экстрагированной ДНК может быть оценено с помощью внесения ДНК (см. ISO 24276, ISO 21569 и ISO 21570). Количество добавленной ДНК не должно превышать максимальный уровень, допустимый для применяемой системы ПЦР, и должно содержать установленное число копий последовательности мишени. Это число необходимо определять отдельно для каждой последовательности мишени и указывать как кратное нижнему пределу обнаружения. В идеальном случае концентрация мишени в ПЦР при положительном контроле должна соответствовать чувствительности, требуемой для анализа. При использовании в качестве положительного контроля ПЦР высококонцентрированной клонированной искомой последовательности ДНК необходимо соблюдать осторожность из-за высокой опасности перекрестного загрязнения. По возможности нуклеиновые кислоты положительного контроля должны максимально соответствовать параметрам нуклеиновых кислот исследуемого материала.
5.3 Количественная оценка экстрагированной ДНК
5.3.1 Общие положения
Качество, целостность и количество матрицы нуклеиновой кислоты оказывают влияние на рабочие характеристики аналитического метода и, следовательно, на полученные аналитические результаты. Предел обнаружения конкретного метода может, таким образом, зависеть от количества использованных нуклеиновых кислот.
Количественная оценка ДНК помогает при:
- определении эффективности различных методов выделения ДНК для определенного вида объектов (повторяемость);
- измерении концентрации нуклеиновых кислот перед анализом.
5.3.2 Область применения
Каждый метод количественной оценки должен применяться в пределах его динамического диапазона с учетом уровня прецизионности.
5.3.3 Количественные стандарты
Точность методов количественной оценки зависит от стандартов нуклеиновых кислот, используемых для калибровки метода.
При использовании метода, чувствительного к размеру и/или качеству фрагментов нуклеиновой кислоты, должны применяться стандарты нуклеиновой кислоты, которые соответствуют размеру и/или качеству ожидаемой нуклеиновой кислоты, экстрагированной из пробы.
Используемый референсный материал (национальный или международный стандартный образец) должен обеспечивать прослеживаемость заявленных характеристик по непрерывной цепи сравнения до национального или международного эталона (см. ISO Guide 30).
При применении метода с использованием интеркалирующих агентов необходимо применять стандарт ДНК с высокой молекулярной массой, если количественной оценке подлежит ДНК с высокой молекулярной массой. Соответственно, необходимо использовать стандарт ДНК с низкой молекулярной массой при количественной оценке ДНК с низкой молекулярной массой. Нуклеиновая кислота с высокой молекулярной массой, как правило, содержит некоторое количество фрагментов с более низкой молекулярной массой. Это означает, что многие методы количественной оценки ДНК имеют определенную степень неточности, которую необходимо учитывать при оценке результатов.
Примечание - Кроме того, в зависимости от исследуемого материала и применяемого метода экстрагирования некоторая часть экстрагируемой ДНК может быть извлечена в виде одноцепочечной ДНК (которая имеет гораздо более низкую способность к интеркаляции), что приводит к занижению общего содержания ДНК. С другой стороны, одноцепочечная ДНК также хорошо обнаруживается путем физических измерений.
Для построения калибровочного графика требуется не менее трех точек, предпочтительно в повторах. Количество стандартной ДНК, использованной для каждой точки калибровочного графика, зависит от чувствительности метода и динамического диапазона измерений.
5.4 Стабильность экстрагированной ДНК
Экстрагированная ДНК должна храниться в условиях, которые обеспечивают ее стабильность для проведения последующих анализов.
Следует избегать многократного замораживания и оттаивания растворов ДНК.
6 Оценка результатов
Применяемый метод экстрагирования ДНК должен обеспечивать получение нуклеиновой кислоты, качество и количество которой соответствуют требованиям последующих анализов.
Качество выделенных нуклеиновых кислот должно быть удостоверено соответствующим аналитическим методом с регистрацией и оценкой параметров, аналогичных используемым при анализе (например, если методом анализа является ПЦР, то и качество выделенных нуклеиновых кислот удостоверяется ПЦР).
Дополнительные параметры для оценки совместимости метода указаны в ISO 21569, ISO 21570 и ISO 24276.
7 Протокол испытаний
В случае представления протокола испытаний в соответствии с ISO 24276 в него должна быть включена следующая дополнительная информация о деятельности лаборатории:
- описание происхождения проб для анализа и предварительной обработки пробы перед экстрагированием нуклеиновой кислоты;
- размер проб для анализа, используемых для экстрагирования нуклеиновой кислоты;
- используемый метод экстрагирования нуклеиновой кислоты;
- любые нетипичные ситуации, наблюдаемые во время проведения испытаний;
- любая операция, не указанная в методе или рассматриваемая как необязательная, которая может оказать влияние на результаты;
- оценка результатов;
- персонал.
Обработка и хранение исходных данных изложены в ISO/IEC 17025.
Приложение А
(обязательное)
Методы экстрагирования ДНК
А.1 Получение применимой для ПЦР ДНК методами экстрагирования ДНК на основе фенола/хлороформа
А.1.1 Основной метод на основе фенола/хлороформа
А.1.1.1 Общие положения
Данный метод (см. [5]) применяется для экстрагирования ДНК из большой группы матриц (см. А.1.1.8).
Фенол обычно подходит для деструкции нуклеазы и денатурации белка.
При исследовании лиственной или зеленой массы растений (например, листьев цикория, высушенной люцерны) вместе с ДНК также могут соосаждаться многие ингибиторы ПЦР. По этой причине могут возникнуть трудности, связанные с повторяемостью получения ДНК, амплифицируемой в ПЦР.
С учетом агрессивных и опасных свойств фенола в качестве альтернативы целесообразно применять методы экстрагирования ДНК, основанные на ЦТАБ, и/или поливинилпирролидоне (ПВП), и/или на адсорбции диоксидом кремния.
А.1.1.2 Статус валидации
Этот метод широко применяется во всех областях биологии, агрономии и медицины на протяжении 40 лет, однако он никогда не подвергался оценке путем межлабораторных исследований для обнаружения ГМО в пищевых продуктах.
А.1.1.3 Принцип метода
Метод включает стадию лизиса (термический лизис в присутствии додецилсульфата натрия и этилендиаминтетрауксусной кислоты (EDTA) высокой концентрации) и последующее удаление загрязняющих примесей (например, липофильных молекул, полисахаридов и белков) и нуклеаз из водной фазы, содержащей ДНК, с помощью фенола и хлороформа. Заключительное осаждение этанолом концентрирует ДНК и удаляет соли и остаточный хлороформ. Критическим этапом метода является стадия лизиса [5].
А.1.1.4 Меры предосторожности
Работы с органическими реактивами необходимо выполнять в вытяжном шкафу.
А.1.1.5 Реактивы
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
А.1.1.5.10 Калия гидроксид (KOH).
А.1.1.5.11 Калия хлорид (KCI).
А.1.1.5.13 Протеиназа К, приблизительно 20 ед./мг лиофилизата.
А.1.1.5.14 Рибонуклеаза-А, выделенная из бычьей поджелудочной железы, очищенная от ДНК, приблизительно 50 Kunitz ед./мг (50000 ед./мг) лиофилизата.
А.1.1.5.15 Насыщенный фенол, рН>7,8.
Используется фенол, насыщенный буфером для экстрагирования/лизиса (А.1.1.5.18), без SDS, или приготовленный в соответствии с [5] или рекомендациями изготовителя.
А.1.1.5.16 Смесь хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 24 объемные части хлороформа (А.1.1.5.7) и 1 объемную часть изоамилового спирта (А.1.1.5.5).
А.1.1.5.17 Смесь фенол - хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 1 объемную часть насыщенного фенола (А.1.1.5.15) и 1 объемную часть смеси хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.1.5.16).
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или KOH.
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
Довести значение рН до 5,2 ледяной уксусной кислотой. Не автоклавировать. При необходимости пропустить через фильтр с размером пор 0,22 мкм.
А.1.1.6 Оборудование
Используется обычное лабораторное оборудование, в частности следующее.
А.1.1.6.1 Центрифуга, поддерживающая ускорение не менее 10000 g. На некоторых стадиях анализа необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.1.1.6.2 Водяная баня или инкубатор с рабочим диапазоном температур от 60°С до 70°С.
А.1.1.6.3 Вакуумная сушилка (при необходимости).
А.1.1.6.4 Сублимационная сушилка (при необходимости).
А.1.1.6.5 Встряхиватель, например Vortex*.
_______________
* Vortex - это пример коммерчески доступного оборудования, пригодного для использования с описываемым методом. Эта информация приводится исключительно для информации пользователей настоящего стандарта и ни при каких условиях не может служить рекомендацией или одобрением конкретного типа оборудования. Допускается использование аналогичного оборудования, при условии, что оно позволяет получать такие же результаты.
А.1.1.6.6 Реакционные сосуды, способные выдержать заморозку в жидком азоте.
А.1.1.7 Методика
А.1.1.7.1 Общие положения
Сразу после приготовления навески пробы из исследуемого продукта (матрицы) необходимо выполнить описанную ниже процедуру экстрагирования и очистки ДНК.
При изменении размера навески пробы требуется соответственно масштабировать массы реактивов и объемы реактивов.
А.1.1.7.2 Методика экстрагирования
Взвесить 0,25 г анализируемой пробы в микропробирке.
Добавить 1,6 мл буфера для экстрагирования/лизиса (А.1.1.5.18) и в случае необходимости (например, для проб с высоким содержанием белка) 50 мкл раствора протеиназы-К (А.1.1.5.20). Инкубировать при температуре от 60°С до 70°С, обычно в течение от 30 мин до 2 ч (также возможно инкубирование в течение ночи). Добавить рибонуклеазу-А (А.1.1.5.21) до конечной концентрации 0,1 мкг/мл. Центрифугировать при ускорении 5000 g в течение 30 мин. Извлечь образовавшийся верхний слой (супернатант) и перенести в чистую пробирку. Добавить к нему 1 объем насыщенного фенола (А.1.1.5.15), затем осторожно и тщательно перемешать. Центрифугировать при ускорении 5000 g в течение 15 мин, перенести верхнюю водную фазу в чистую пробирку. Добавить к верхнему слою 1 объем смеси фенол - хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.1.5.17), затем осторожно и тщательно перемешать. Центрифугировать при ускорении 5000 g в течение 15 мин, перенести верхнюю водную фазу в чистую пробирку. В зависимости от состава матрицы пробы данную процедуру повторяют один или несколько раз до тех пор, пока граница раздела фаз не станет четкой.
Добавить к верхнему слою 1 объем смеси хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.1.5.16), затем осторожно и тщательно перемешать. Центрифугировать при ускорении 5000 g в течение 10 мин и перенести верхнюю водную фазу в чистую пробирку. Повторять до тех пор, пока граница раздела фаз не станет четкой. Смешать образовавшийся верхний слой с 0,1 объема раствора ацетата калия (А.1.1.5.23) и 2,5 объема 96%-ного этанола (А.1.1.5.1), затем тщательно перемешать, перевернув пробирки. Инкубировать в течение по меньшей мере 5 мин в жидком азоте или 1 ч при температуре минус 80°С или всю ночь при температуре минус 20°С. Центрифугировать при ускорении 10000 g до 13000 g при температуре 4°С в течение по меньшей мере 15 мин, затем осторожно слить образовавшийся верхний слой.
Тщательно промыть осадок ДНК в пробирке после центрифугирования 2 объемами 70%-ного раствора этанола (А.1.1.5.22). Центрифугировать при ускорении от 10000 g до 13000 g при температуре 4°С в течение 15 мин, затем осторожно слить образовавшийся верхний слой. Эта стадия является особенно важной для удаления осаждающихся солей, которые могут оказать влияние на последующий анализ (например, ПЦР).
Высушить осадок в пробирке после центрифугирования и повторно растворить его в 100 мкл воды или соответствующего буфера, например буфера ТЕ (А.1.1.5.19). Полученный раствор представляет собой основной раствор ДНК. Добавить рибонуклеазу-А (А.1.1.5.21) до конечной концентрации 0,1 мкг/мл.
А.1.1.8 Перечень примеров
Описанный метод был успешно применен для экстрагирования ДНК * из следующих матриц: подкисленная соя, квашеные соевые бобы *, обезвоженная люцерна, детское сухое печенье *, детское молоко *, бактерии и их споры, семена ячменя, говяжий/свиной паштет *, пиво *, голубой сыр, шоколадное пирожное с орехами *, консервированная кукуруза, семена моркови, брикетированный зерновой концентрат *, сыр, нугат с курицей, листья цикория, корни цикория, печенье, глазированное шоколадом *, шоколадная паста *, печенье с корицей *, компоты, кукурузные хлопья *, дробленый рис, десертный крем *, высушенные семена гороха, кукурузное печенье, кормовой кукурузный жмых, кукурузная мука, кукурузный глютеновый корм, семена кукурузы, гранулированный корм из маниоки, мясо в муке из маниоки, мясо свежее и подвергнутое тепловой обработке * (говядина, свинина, курица и индейка), мякоть дыни, семена дыни, рубленое мясо, ингредиенты мюсли, мюсли *, побеги золотистой фасоли *, семена овса, клубни картофеля, кормовой рапсовый жмых, глупаколца, семена рапса, колбаса (реализуемая в ломтиках * и коктейльные сосиски * (см. А.1.2 для усовершенствованного метода экстрагирования), шницель, суй хой син *, суповые шарики, соевый белок в мясных продуктах *, соевый лецитин (необработанный коричневый и желтый рафинированный *), побеги сои *, соевые напитки, соя, соевый крем, кормовой соевый жмых, соевый творог, соус для спагетти *, семена спельты, сахарная свекла (сушеный жом), сахарная свекла (свежие корнеплоды), семена сахарной свеклы, семена подсолнечника, тофу, мясистые свежие томаты, томатная паста *, семена томатов, вегетарианский рубленый шницель, вафли (с * шоколадом и без *), пшеничные отруби, пшеничная мука, глютеновый корм из пшеницы, семена пшеницы, крупка из твердой пшеницы, йогурт * (см. А.1.3 для усовершенствованного метода экстрагирования).
_______________
* Повторяемость может зависеть от партии матрицы и/или технологии ее получения. В некоторых случаях ДНК не может быть обнаружена или она подверглась расщеплению таким образом, что результаты ПЦР оказываются ниже предела обнаружения метода независимо от используемых затравок (праймеров), протоколов ПЦР. Это может быть причиной низкой воспроизводимости результатов между лабораториями.
А.1.2 Метод на основе фенола/хлороформа. Процедура для заквасочных культур колбас, подвергнутых ферментации
А.1.2.1 Общие положения
Этот метод предназначен для выделения общей ДНК, включая бактериальную геномную ДНК, из колбас. Применимость метода для получения ДНК высокого качества, пригодной для специфического обнаружения рекомбинантной ДНК с использованием ПЦР, была продемонстрирована на колбасах, подвергнутых ферментации [6], а также на колбасах, подвергнутых ферментации и термической обработке, так называемых летних колбасах [7]. Кроме того, было показано, что данный метод экстрагирования пригоден для выделения общей ДНК из сливок специально для обнаружения Staphylococcus aureus в этой пищевой матрице [8]. (Перечень матриц, для которых применим этот метод, приведен в А.1.2.8.)
А.1.2.2 Статус валидации
Этот метод был проверен при межлабораторном исследовании навески пробы массой 0,4 г (см. А.1.2.9).
А.1.2.3 Принцип метода
Метод заключается в выделении бактериальных клеток из пищевой матрицы путем гомогенизации проб колбас с последующей стадией центрифугирования. Полученный осадок содержит не только бактериальные клетки, но также и частицы мяса. Для проведения специфического лизиса бактериальных клеток их оболочки расщепляют, добавляя лизоцим. Для улучшения расщепления клеточных оболочек молочнокислых бактерий мяса может быть добавлен мутанолизин. Полный лизис клеток происходит при добавлении детергента SDS (додецилсульфата натрия) и протеиназы-К, а затем несколько раз проводится экстрагирование водной фазы фенолом и/или хлороформом. Стадия экстрагирования фенолом/хлороформом является важной для устранения любой нуклеазной активности и ингибиторов ПЦР, включая те, которые возникли из пищевой матрицы (например, гематин). Последним этапом является осаждение ДНК этанолом.
А.1.2.4 Меры безопасности
Работы с органическими реактивами должны выполняться в вытяжном шкафу.
А.1.2.5 Реактивы
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
А.1.2.5.5 Натрия гидроксид (NaOH).
А.1.2.5.12 Лизоцим
А.1.2.5.14 Протеиназа-К, приблизительно 20 ед./мг лиофилизата.
А.1.2.5.16 Насыщенный фенол
Используется фенол, насыщенный буферным раствором Трис/HCI (рН>7,8) или приготовленный в соответствии с [5] или рекомендациями изготовителя.
А.1.2.5.17 Смесь хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 24 объемные части хлороформа (А.1.2.5.8) и 1 объемную часть изоамилового спирта (А.1.2.5.6).
А.1.2.5.18 Смесь фенол - хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 1 объемную часть насыщенного фенола (А.1.2.5.16) с 24 объемными частями хлороформа (А.1.2.5.8) и 1 объемной частью изоамилового спирта (А.1.2.5.6).
А.1.2.5.19 Раствор мутанолизина в стерильной воде, содержащий 500 или 5000 ед./мл мутанолизина.
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегая многократного замораживания и оттаивания.
А.1.2.5.20 Раствор лизоцима в стерильной воде концентрацией 10 мг/мл.
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегая многократного замораживания и оттаивания.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
А.1.2.5.23 Буфер для экстрагирования/лизиса, содержащий 1 объемную часть буфера А (А.1.2.5.22) и 1 объемную часть раствора сахарозы (А.1.2.5.21).
А.1.2.5.25 Раствор протеиназы-К концентрацией 20 мг/мл.
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегая многократного замораживания и оттаивания.
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
Довести значение рН до 5,2 ледяной уксусной кислотой.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
А.1.2.6 Оборудование
А.1.2.6.1 Инструменты для измельчения пробы (например, скальпель)
А.1.2.6.2 Центрифуга, поддерживающая ускорение как минимум 12000 g. На некоторых стадиях анализа необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.1.2.6.3 Водяная баня или инкубатор.
А.1.2.6.4 Вакуумная сушилка (при необходимости).
А.1.2.6.5 Смеситель, например Vortex.
А.1.2.7 Методика
А.1.2.7.1 Общие положения
Сразу после приготовления навески пробы из исследуемого продукта (матрицы) необходимо выполнить описанную ниже процедуру экстрагирования и очистки ДНК.
При изменении размера навески пробы требуется соответственно масштабировать массу реактивов и объем реактивов.
А.1.2.7.2 Приготовление пробы
Измельчить колбасу, гомогенизировать и добавить к 200-500 мг гомогенизата 3 объема воды (до 1,5 мл). Выдержать при комнатной температуре приблизительно 10 мин.
А.1.2.7.3 Методика экстрагирования
Осторожно перенести 500 мкл водной фазы (суспензии) в новую пробирку. Центрифугировать в течение 10 мин при ускорении 12000 g.
Отбросить образовавшийся сверху слой и повторно растворить осадок после центрифугирования в 500 мкл буфера для экстрагирования/лизиса (А.1.2.5.23).
Добавить 50 мкл раствора лизоцима (А.1.2.5.20). Инкубировать при температуре 37°С в течение 1 ч. Если результаты неудовлетворительные, можно добавить к лизоциму 10 ед. мутанолизина (А.1.2.5.19). Однако перед систематическим применением необходимо проверить специфичное для матрицы воздействие этой добавки.
Добавить 25 мкл раствора SDS (А.1.2.5.24) и 25 мкл раствора протеиназы-К (А.1.2.5.25), затем инкубировать в течение 10 мин при температуре 60°С.
Добавить 1 объем смеси фенол - хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.2.5.18) и перемешать.
Центрифугировать смесь в течение 3 мин при ускорении приблизительно 12000 g. Перенести верхнюю водную фазу в новую пробирку.
Добавить 1 объем смеси хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.2.5.17) и перемешать.
Центрифугировать смесь в течение 3 мин при ускорении приблизительно 12000 g. Перенести верхнюю фазу в новую пробирку.
Добавить 0,1 объема раствора ацетата натрия (А.1.2.5.27) и 1 объем изопропанола (А.1.2.5.1). Осторожно перемешать несколько раз путем переворачивания пробирки.
Выдержать при комнатной температуре не менее 30 мин. Центрифугировать в течение 15 мин при ускорении приблизительно 12000 g. Декантировать образовавшийся верхний слой и отбросить его.
Тщательно промыть осадок после центрифугирования не менее 500 мкл раствора этанола (А.1.2.5.26), осторожно встряхивая или перемешивая. Центрифугировать смесь в течение 10 мин при ускорении приблизительно 12000 g. Эта стадия является особенно важной для удаления осаждающихся солей, которые могут оказать влияние на последующий анализ (например, ПЦР).
Отбросить образовавшийся верхний слой.
Высушить осадок после центрифугирования и повторно растворить его в 100 мкл воды или соответствующего буфера, например буфера ТЕ (А.1.2.5.28). Полученный раствор является основным раствором ДНК.
А.1.2.8 Перечень примеров
См. таблицу А.1.
Таблица А.1 - Перечень матриц, к которым был успешно применен данный метод
Успешно проанализированные матрицы | Микроорганизм | Ссылка |
Колбаса, подвергнутая ферментации | Lactobacillus curvatus | [6] |
Летняя колбаса (термообработанная) | Lactobacillus curvatus | [7] |
Сливки | Staphylococcus aureus | [8] |
A.1.2.9 Валидация
Данные по валидации, приведенные в таблице А.2, были получены в результате совместного исследования, выполненного рабочей группой "Разработка методов идентификации пищевых продуктов, полученных с использованием способов генной инженерии" Комиссии Федерального управления по охране здоровья Германии для внедрения методов согласно статье 35 закона Германии о пищевых продуктах [6].
При проведении этого исследования две пробы дали ошибочные положительные результаты, вызванные, возможно, недостатками упаковки. Для данного исследования мутанолизин не использовался.
Таблица А.2 - Данные по валидации
Количество участвующих лабораторий | Количество проб колбасы на лабораторию | Общее количество проб | Количество правильно идентифицированных проб |
15 | 10 | 150 | 148 (контрольные пробы и пробы ГМО) |
А.1.3 Метод на основе фенола/хлороформа. Процедура для заквасочных культур йогурта
А.1.3.1 Общие положения
Этот метод описывает методику экстрагирования основной массы ДНК из заквасочных культур, используемых для ферментации йогурта из молочных продуктов. Эта методика успешно применяется для обычных йогуртов, включая йогурты, содержащие различные ингредиенты, такие как фрукты, добавки и стабилизаторы, а также для продуктов с различным содержанием жира (см. А.1.3.8 и [9]-[11]). Из йогуртов, подвергнутых термической обработке [12], также экстрагируется ДНК, применимая для ПЦР.
А.1.3.2 Статус валидации
Этот метод был проверен при межлабораторном исследовании (см. А.1.3.9).
А.1.3.3 Принцип метода
Этот метод основывается на методике экстрагирования смесью фенол - хлороформ, которая адаптирована к специальной пищевой матрице (составу) пробы. Грамположительные заквасочные культуры йогуртов концентрируются после расщепления коагулированного казеина при щелочном рН. Выделенные клетки повторно суспендируют в буферном водном растворе и обрабатывают лизоцимом (и мутанолизином) для расщепления клеточных оболочек. Лизис клеток происходит при добавлении ионного детергента, такого как додецилсульфат натрия (SDS). Белки удаляют путем обработки протеиназой-К, а затем экстрагируют смесью фенол - хлороформ и хлороформом в несколько стадий. Последней стадией является осаждение ДНК этанолом.
А.1.3.4 Меры безопасности
Работы с органическими реактивами должны выполняться в вытяжном шкафу.
А.1.3.5 Реактивы
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
А.1.3.5.4 Хлорид натрия (NaCI).
А.1.3.5.7 Гидроксид натрия (NaOH).
А.1.3.5.16 Протеиназа-К, приблизительно 20 ед./мг лиофилизата.
Растворить в стерильной воде. Не автоклавировать. Перед использованием готовить свежий раствор.
Целесообразно готовить концентрированный основной раствор SSC 20х (например, 20-кратный основной раствор, так как растворы с высокой концентрацией солей обычно более устойчивы). Разбавлять перед использованием.
А.1.3.5.21 Насыщенный фенол
Используется фенол со значением рН 8 и насыщенный буфером Трис/HCI (рН>7,8) или, например, приготовленный в соответствии с [5] или рекомендациями изготовителя.
А.1.3.5.22 Смесь хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 24 объемные части хлороформа (А.1.3.5.10) и 1 объемную часть изоамилового спирта (А.1.3.5.8).
А.1.3.5.23 Смесь фенол - хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 25 объемных частей насыщенного фенола (А.1.3.5.21) с 24 объемными частями хлороформа (А.1.3.5.10) и 1 объемной частью изоамилового спирта (А.1.3.5.8).
А.1.3.5.24 Раствор мутанолизина в стерильной воде, содержащий 500 или 5000 ед./мл мутанолизина.
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
А.1.3.5.25 Раствор лизоцима в стерильной воде, содержащий 10 мг/мл лизоцима.
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
А.1.3.5.28 Буфер для экстрагирования/лизиса, содержащий 1 объемную часть буферного раствора А (А.1.3.5.27) и 1 объемную часть раствора сахарозы (А.1.3.5.26).
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
Доводят значение рН до 5,2 ледяной уксусной кислотой.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
А.1.3.6 Оборудование
Применяется обычное лабораторное оборудование, в частности следующее.
А.1.3.6.1 Центрифуга, поддерживающая ускорение не менее 12000 g. На некоторых стадиях анализа необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.1.3.6.2 Водяная баня или инкубатор.
А.1.3.6.3 Вакуумная сушилка (при необходимости).
А.1.3.6.4 Смеситель, например Vortex.
А.1.3.7 Методика
А.1.3.7.1 Общие положения
Сразу после приготовления навески пробы из исследуемого продукта (матрицы) необходимо выполнить описанную ниже процедуру экстрагирования и очистки ДНК.
При изменении размера пробы требуется соответственно масштабировать массы реактивов и объемы реактивов.
А.1.3.7.2 Методика экстрагирования
Хорошо встряхнуть или перемешать йогурт. Перенести 250 мкл йогурта в пробирку вместимостью 2 мл. Добавить 80 мкл раствора цитрата натрия (А.1.3.5.18). Добавить 150 мкл раствора NaOH (А.1.3.5.19) и хорошо перемешать. Центрифугировать при ускорении 12000 g в течение 2 мин.
Осадок после центрифугирования должен иметь диаметр не более 0,7 см и занимать объем не более 100 мкл. В противном случае указанные стадии (добавление 80 мкл раствора цитрата натрия и 150 мкл раствора NaOH) необходимо повторить.
Отбросить верхний слой жира и образовавшийся верхний водный слой и повторно суспендировать осадок после центрифугирования в 500 мкл раствора 5х SSC (А.1.3.5.20). Центрифугировать не менее 2 мин при ускорении около 12000 g. Отбросить образовавшийся верхний слой. Повторно суспендировать осадок после центрифугирования в 500 мкл раствора 5х SSC. Центрифугировать в течение 2 мин при ускорении около 12000 g. Отбросить образовавшийся верхний слой.
Повторно суспендировать осадок после центрифугирования в 500 мкл буфера для экстрагирования/лизиса (А.1.3.5.28). Добавить 50 мкл раствора лизоцима (А.1.3.5.25). Инкубировать при температуре 37°С в течение 1 ч. Если результаты неудовлетворительные, к лизоциму может быть добавлено 10 ед. мутанолизина (А.1.3.5.24). Однако перед систематическим применением необходимо проверить специфичное для матрицы воздействие этой добавки.
Добавить 25 мкл раствора SDS (А.1.3.5.29) и 25 мкл раствора протеиназы-К (А.1.3.5.30). Инкубировать в течение 10 мин при температуре 60°С. Добавить 500 мкл смеси фенол - хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.3.5.23) и перемешать. Центрифугировать в течение 3 мин при ускорении около 12000 g. Перенести верхнюю водную фазу в новую пробирку. Добавить 1 объем смеси хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.3.5.22) и перемешать. Центрифугировать в течение 3 мин при ускорении около 12000 g.
Перенести верхнюю фазу в новую пробирку. Добавить 0,1 объема раствора ацетата натрия (А.1.3.5.32) и 1 объем изопропанола (А.1.3.5.1). Выдержать при комнатной температуре не менее 30 мин. Центрифугировать в течение 15 мин при ускорении около 12000 g. Отбросить образовавшийся верхний слой. Тщательно промыть осадок после центрифугирования не менее 500 мкл раствора этанола (А.1.3.5.31). Центрифугировать смесь в течение 10 мин при ускорении около 12000 g. Эта стадия является очень важной для удаления осаждающихся солей, которые могут оказывать влияние на последующий анализ (например, ПЦР).
Отбросить образовавшийся верхний слой.
Высушить осадок после центрифугирования и повторно растворить его в 100 мкл воды или соответствующего буфера, например буфера ТЕ (А.1.3.5.33). Полученный раствор является основным раствором ДНК.
А.1.3.8 Перечень примеров
См. таблицу А.3.
Таблица А.3 - Перечень матриц, к которым был успешно применен указанный метод
Успешно проанализированные матрицы | Содержание, добавки и т.д. | Микроорганизм | Ссылка |
Обычный йогурт | 0,3% жира, 3,5% жира | Streptococcus thermophilus | [9], [11] |
Фруктовые йогурты | 1,5% жира, модифицированный крахмал, лесной орех, желатин
1,5% жира, 3,8% белка, аспартам, ацесульфам, ананас
3,5% жира, ароматизатор, желатин, персик, кокосовый орех
10% жира, модифицированный крахмал, лимон, ароматизатор, миндаль, пектин, каротин, рибофлавин | Streptococcus thermophilus | [9] |
Термообработанный обычный йогурт | 3,5% жира | Streptococcus thermophilus | [12] |
A.1.3.9 Валидация
Данные по валидации, приведенные в таблице А.4, были получены в результате совместного исследования, выполненного рабочей группой "Разработка методов идентификации пищевых продуктов, полученных с использованием способов генной инженерии" Комиссии Федерального управления по охране здоровья Германии для внедрения методов согласно статье 35 закона Германии о пищевых продуктах [11].
При проведении этого исследования две лаборатории не выполнили проверку гибридизацией. Для данного исследования мутанолизин не использовался.
Таблица А.4 - Данные по валидации
Количество участвующих лабораторий | Количество проб йогурта на лабораторию | Общее количество проб | Количество правильно идентифицированных проб |
20 | 10 | 200 | 200 (99 контрольных проб и 101 проба ГМО) |
А.1.4 Метод на основе фенола/хлороформа. Процедура для дрожжей и/или гифомицетов, собранных из пищевых продуктов
А.1.4.1 Общие положения
Данный метод описывает одноступенчатое экстрагирование и очистку ДНК, пригодной для ПЦР, из дрожжей, гифомицетов [13] или выделенных микробных популяций. Метод применим для экстрагирования ДНК из генетически модифицированных микроорганизмов в пробах с очень сложной матрицей [14], [15]. Метод может использоваться для экстрагирования общей ДНК из матриц [14], [15] или из микробной фракции, которая непосредственно выделена из матрицы либо собрана из заквасочных культур (колонии на жидких или агаровых средах).
Примечание - Предварительное выделение микробной фракции из пробы для анализа дает наиболее достоверные результаты при экстрагировании ДНК.
Общую ДНК из матрицы пробы допускается экстрагировать с помощью альтернативных методов, приведенных в приложении А. Однако эти методы не гарантируют, что достаточное количество ДНК будет выделено из всех микроорганизмов (особенно из грибов, устойчивых к лизису, или грамотрицательных бактерий). Данный метод может использоваться для экстрагирования общей ДНК из таких матриц, как йогурт, молоко или сыр. Однако было показано, что достоверное экстрагирование хорошо обеспечивается только для тонкоизмельченных или размолотых твердых матриц. В силу этого перед применением метода его эффективность необходимо всегда проверять на основной матрице исследуемой пробы.
А.1.4.2 Статус валидации
Этот метод экстрагирования ДНК был применен и проверен [13] на 25 родах грибов, представляющих 325 видов (включая дрожжи, используемые в хлебопекарном производстве или виноделии, и Penicillia spp. [16], используемые производителями голубого сыра), в форме мицелия и спор (среди которых виды, наиболее устойчивые к разрыву или лизису, например Aspergillus fumigatus и Cryptococcus neoformans). Данный метод был разработан таким образом, чтобы избежать лабораторного загрязнения и загрязнения между пробами. Такое свойство метода позволяет применять его для проведения систематических экстрагирований ДНК и ПЦР в больших объемах. При применении метода не было обнаружено изменений качества матрицы при качественной ПЦР после долгосрочного хранения при температуре минус 20°С в течение 5 лет или между различными препаратами ДНК из одного и того же организма. Несмотря на то, что качество экстрагированной данным методом ДНК подходит для качественной ПЦР, она может подвергаться недостаточному расщеплению в процессе рестрикционного анализа. Однако для использования ДНК, экстрагированной данным методом, для количественной ПЦР необходимо выполнить процедуру ее дополнительной очистки с применением другого метода, например такого, который описан в А.4.
Этот метод, примененный к микробным осадкам после центрифугирования и мицелиальной пленке, был подвергнут межлабораторной проверке [17].
А.1.4.3 Принцип метода
Как правило, бактерии, дрожжи или мицелий разрушаются и ДНК одновременно экстрагируется при перемешивании с высокой скоростью в присутствии стеклянных шариков в смеси трис - фенол - хлороформ - EDTA - SDS, а затем осаждается этанолом.
А.1.4.4 Меры безопасности
Работы с органическими реактивами должны выполняться в вытяжном шкафу.
А.1.4.5 Реактивы
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
А.1.4.5.12 Гидроксид калия (KOH).
А.1.4.5.14 Рибонуклеаза-А, выделенная из бычьей поджелудочной железы, свободная от дезоксирибонуклеазы, приблизительно 50 Kunitz ед./мг лиофилизата.
А.1.4.5.15 Насыщенный фенол, рН>7,8.
Используют фенол (А.1.4.5.8), приготовленный в соответствии с [5] или (по выбору) полностью насыщенный буфером для экстрагирования (А.1.4.5.18) без SDS или в соответствии с рекомендациями изготовителя.
А.1.4.5.16 Смесь хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 24 объемные части хлороформа (А.1.4.5.9) с 1 объемной частью изоамилового спирта (А.1.4.5.7).
А.1.4.5.17 Смесь фенол - хлороформ - изоамиловый спирт
Смешать 1 объемную часть насыщенного фенола (А.1.4.5.15) с 1 объемной частью смеси хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.4.5.16).
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
Хранить при температуре минус 20°С.
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
Довести значение рН до 5,2 ледяной уксусной кислотой. Не автоклавировать. При необходимости пропустить через фильтр с размером пор 0,22 мкм.
А.1.4.5.23 Кондиционированные стеклянные шарики
Использовать свежеприготовленный водный раствор.
А.1.4.6 Оборудование
Используется обычное лабораторное оборудование, в частности следующее.
А.1.4.6.1 Встряхиватель для полиэтиленовых микропробирок вместимостью 2 мл с навинчивающимися колпачками. Скорость встряхивания - не менее 100 встряхиваний/мин (например, Mini-BeadBeater™ *).
_______________
* Mini-BeadBeater - пример подходящего оборудования, имеющегося в продаже из Biospec-оборудования. Эта информация приводится для удобства пользователей настоящего стандарта и не предполагает неукоснительного применения. Может использоваться эквивалентное по параметрам оборудование, если его применение приводит к тем же результатам.
А.1.4.6.2 Микропробирки, полиэтиленовые пробирки вместимостью 2 мл с кольцевым уплотнением и навинчивающимися колпачками.
А.1.4.6.3 Устройство для фильтрования, фильтры из стекловолокна диаметром 25 мм.
А.1.4.6.4 Центрифуга с ускорением как минимум 10000 g, с ротором, способным удерживать микропробирки вместимостью 2 мл.
На некоторых стадиях анализа необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.1.4.6.5 Водяная баня или инкубатор.
А.1.4.6.6 Вакуумная сушилка (при необходимости). Рекомендуется для приготовления стеклянных шариков (А.1.4.5.23).
А.1.4.6.7 Смеситель, например Vortex.
А.1.4.7 Методика
А.1.4.7.1 Приготовление навески пробы и микробной фракции
Методы выделения микробных фракций, использующие этап обогащения, могут быть приведены в технических нормативных правовых актах по микробиологическому контролю пищевой продукции. Микробная фракция, полученная после этапа обогащения, может быть использована для выделения ДНК.
Исходя из навески пробы объемом 1-2 мл выделить микробиологическую популяцию соответствующим образом (см. А.1.3). В качестве альтернативы дрожжи или гифомицеты, выделенные из навески пробы, могут культивироваться как заквасочные культуры. В обоих случаях микроорганизмы собираются и подвергаются дальнейшей обработке в соответствии с А.1.4.7.2 или хранятся при температуре минус 20°С до начала обработки.
А.1.4.7.2 Экстрагирование ДНК
А.1.4.7.2.1 Мицелий, собранный на фильтре из стекловолокна, дважды промыть буфером для экстрагирования/лизиса (А.1.4.5.18), не содержащим SDS. Снять мицелиальную пленку с фильтра и перенести ее в микропробирку вместимостью 2 мл с навинчивающимся колпачком (А.1.4.6.2), содержащую 600 мкл буфера для экстрагирования/лизиса (А.1.4.5.18) и 600 мкл смеси фенол - хлороформ - изоамиловый спирт (А.1.4.5.17) и наполовину заполненную кондиционированными стеклянными шариками (А.1.4.5.23). Дальнейшая обработка описана в А.1.4.7.2.3.
А.1.4.7.2.2 С осадками после центрифугирования либо общей микробной популяции, бактерий, мицелия, дрожжей, либо дрожжеподобных микроорганизмов необходимо выполнить следующие процедуры. Промыть клетки один раз 1 мл буфера для экстрагирования/лизиса (А.1.4.5.18), не содержащего SDS, центрифугировать при ускорении от 10000 g до 13000 g в течение 10 мин, повторить по меньшей мере еще один раз, затем повторно растворить в 600 мкл буфера для экстрагирования/лизиса (А.1.4.5.18) и перенести в микропробирку, содержащую стеклянные шарики и смесь фенол - хлороформ, как указано в А.1.4.7.2.1.
А.1.4.7.2.3 После стадии А.1.4.7.2.1 или А.1.4.7.2.2 перемешать микропробирку на встряхивателе (А.1.4.6.1) со скоростью не менее 100 встряхиваний/мин в течение 1-2 мин, затем немедленно инкубировать при температуре 65°С в течение от 30 до 120 мин. Центрифугировать при ускорении от 10000 g до 13000 g в течение 10 мин. Перенести образовавшийся верхний слой в новую микропробирку.
В случае применения ДНК для дальнейшей количественной ПЦР необходимо выполнить следующие процедуры. После 30 мин инкубирования центрифугировать при ускорении от 10000 g до 13000 g в течение 15 мин. Перенести образовавшийся верхний слой в новую микропробирку, добавить рибонуклеазу-А (А.1.4.5.20) до конечной концентрации 0,001 мг/мл и инкубировать еще в течение 30-90 мин при температуре 65°С.
Добавить раствор ацетата калия (А.1.4.5.22) до конечной концентрации 0,3 моль/л. Перемешать, добавить 1,2 мл этанола (А.1.4.5.1) и инкубировать всю ночь при температуре минус 20°С или в течение 1 ч при температуре минус 80°С. Осадить ДНК путем центрифугирования при ускорении от 10000 g до 13000 g в течение 15 мин при температуре минус 4°С.
После центрифугирования осторожно промыть осадок ДНК раствором этанола (А.1.4.5.21). Слить образовавшийся сверху слой на бумагу и высушить микропробирку в вакууме. Растворить ДНК в 50-100 мкл воды. Допускается длительное (до 5 лет) хранение при температуре минус 20°С. На основании проведенных проверок [13] допускается использование воды вместо буфера ТЕ (А.1.4.5.19). Полученный раствор является основным раствором ДНК.
А.1.4.8 Перечень примеров
Количество исследованных видов/штаммов указывается в скобках:
Absidia corymbifera (1), Acremonium spp. (2), Aspergillus spp. (119), Candida spp. (7), Cladosporium spp. (2), Cryptococcus spp. (6), Epidermophyton floccosum (1), Fusarium solani (1), Malbranchea pulchella (1), Geotrichum spp.(2), Microsporum canis (1), Paecilomyces spp. (2), Penicillium spp. (20), Pityrosporum ovale (1), Rhizopus spp. (2), Saccharomyces cerevisiae (1), Schizosaccharomyces pombe (1), Scopulariopsis brevicaulis (1), Trichoderma spp. (124), Trichophyton spp. (2), Trichosporon spp. (2), Ulocladium botrytis (1), Verticillium tenerum (1).
A.1.4.9 Валидация
Эффективность метода проверялась в отношении грибов [13]. При количественном анализе эффективности экстрагирования было установлено, что использование дробления с помощью стеклянных шариков было наиболее эффективным [18].
А.2 Получение ДНК, применимой для ПЦР, методами экстрагирования ДНК на основе поливинилпирролидона (ПВП)
А.2.1 Основной метод на основе ПВП
А.2.1.1 Общие положения
Этот простой, быстрый и дешевый метод [19] пригоден для большой группы матриц, особенно содержащих большие количества полифенольных соединений.
А.2.1.2 Статус валидации
Этот метод был проверен путем внутрилабораторной валидации и применяется для систематического экстрагирования ДНК во многих лабораториях. Данный метод еще не оценивался путем официальных межлабораторных исследований.
А.2.1.3 Принцип
Метод включает стадию лизиса (термический лизис в присутствии додецилсульфата натрия и EDTA высокой концентрации) и последующее удаление из водной фазы, содержащей ДНК, загрязняющих примесей, например полифенольных молекул, полисахаридов, метаболитов и растворимых белков, с помощью ПВП в комбинации с ацетатом аммония. Последним этапом является осаждение ДНК этанолом, что концентрирует ДНК и очищает ее от солей (см. [19]-[23]).
А.2.1.4 Меры безопасности
Работы с органическими реактивами должны выполняться в вытяжном шкафу.
А.2.1.5 Реактивы
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
_______________
* SIGMA Р-5288 - пример подходящего реактива, имеющегося в продаже. Эта информация приводится для удобства пользователей настоящего стандарта и не означает обязательность его применения. Могут использоваться эквивалентные реактивы, если их применение приводит к тем же результатам.
А.2.1.5.6 Хлорид натрия (NaCI).
Хранить и использовать при температуре минус 20°С.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
Растворить в стерильной воде. При необходимости пропустить через фильтр с размером пор 0,22 мкм.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
А.2.1.6 Оборудование
Необходимо использовать обычное лабораторное оборудование, в частности следующее.
А.2.1.6.1 Центрифуга, обеспечивающая ускорение 10000 g.
На некоторых этапах необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.2.1.6.2 Водяная баня или инкубатор.
А.2.1.6.3 Вакуумная сушилка (при необходимости).
А.2.1.6.4 Сублимационная сушилка (при необходимости).
А.2.1.6.5 Смеситель, например Vortex.
А.2.1.7 Методика
А.2.1.7.1 Сразу после приготовления навески пробы из исследуемого продукта (матрицы) необходимо выполнить описанную ниже поцедуру экстрагирования и очистки ДНК. При изменении размера навески пробы требуется соответственно масштабировать массы реактивов и объемы реактивов.
А.2.1.7.2 Методика экстрагирования
Взвесить 0,25 г измельченного или жидкого материала в пробирке. Добавить 1 мл буфера для экстрагирования (А.2.1.5.12). Перемешивать суспензию при температуре 65°С в течение 1 ч, охладить до комнатной температуры. Последовательно смешать суспензию с 60 мг порошка ПВП (А.2.1.5.3) и 0,5 объема раствора ацетата аммония (А.2.1.5.13). Инкубировать на льду в течение 30 мин.
Центрифугировать при ускорении 10000 g в течение 10 мин и перенести образовавшийся верхний слой в чистую пробирку. Смешать верхний слой с 1 объемом изопропанола (А.2.1.5.2) и инкубировать при температуре минус 20°С в течение 30 мин. Центрифугировать при ускорении 10000 g и температуре 4°С в течение 10 мин и осторожно отбросить образовавшийся верхний слой.
Промыть осадок ДНК в пробирке после центрифугирования 2 объемами раствора этанола (А.2.1.5.11). Этот этап является важным для удаления любых солей, которые могут оказывать влияние на последующий анализ (например, ПЦР). Осторожно отбросить образовавшийся верхний слой (в случае рыхлого осадка центрифугировать при ускорении 10000 g и температуре 4°С в течение 10 мин). Высушить осадок и повторно растворить его в 100 мкл воды или соответствующего буфера, например буфера ТЕ (А.2.1.5.14). Полученный раствор является основным раствором ДНК.
А.2.1.8 Перечень примеров
Метод был успешно применен для экстрагирования ДНК * из следующих матриц: детское печенье *, детское молоко *, бельгийский паштет, панировка (пшеничная или кукурузная) рыбных палочек, шоколадное пирожное с орехами *, консервированная кукуруза, брикетированный зерновой концентрат *, сырный крокет, нугат с курицей, курица, печенье, глазированное шоколадом *, шоколадная паста *, кукурузные хлопья *, хрустящие овощи, десертный крем *, композиции для вскармливания детей, кукурузное печенье *, кукурузная мука, мясо свежее и подвергнутое тепловой обработке (говядина, свинина, курица и индейка), рубленое мясо, мюсли *, воздушная кукуруза, сухое молоко, колбаса (реализуемая в ломтиках * и коктейльные сосиски *), шницель, побеги сои *, суповые шарики, соевый белок в мясных препаратах *, соевый лецитин *, соевые напитки *, соевый крем, соус для спагетти *, speculoos, соевый творог, вегетарианский рубленый шницель, вафли с шоколадом *, вафли *, йогурт *.
_______________
* Повторяемость может зависеть от партии матрицы и/или технологии ее получения. В некоторых случаях ДНК не может быть обнаружена или она подверглась расщеплению таким образом, что результаты ПЦР оказываются ниже предела обнаружения метода независимо от используемых затравок (праймеров), протоколов ПЦР. Это может быть причиной низкой воспроизводимости результатов между лабораториями.
А.3 Получение ДНК, применимой для ПЦР, методами экстрагирования ДНК на основе ЦТАБ
А.3.1 Основной метод на основе ЦТАБ
А.3.1.1 Общие положения
Этот метод применим для экстрагирования ДНК из растений и из матриц, полученных из растений, так как он позволяет удалять полисахариды и полифенольные соединения, которые могут оказывать негативное влияние на качество экстрагируемой ДНК. Метод также пригоден и для некоторых других матриц (см. А.3.1.8).
А.3.1.2 Статус валидации
Этот метод был проверен путем кольцевого тестирования (см. А.3.1.9).
Этот метод широко используется во многих лабораториях для систематического экстрагирования ДНК.
А.3.1.3 Принцип
Метод включает стадию лизиса (термический лизис в присутствии ЦТАБ) и следующие за ней несколько стадий экстрагирования для удаления загрязняющих примесей, например полисахаридов и белков [24].
Концентрация солей во время проведения стадий экстрагирования - важный параметр для удаления загрязняющих примесей. В случае понижения концентрации солей ниже 0,5 моль/л при комнатной температуре и/или снижения температуры ниже 16°С будет образовываться осадок - ЦТАБ-нуклеиновая кислота. Увеличением концентрации солей (например, при добавлении хлорида натрия) можно добиться очистки от денатурированных белков и полисахаридов, образующих комплексные соединения с ЦТАБ, в то время как нуклеиновые кислоты становятся растворимыми. Хлороформ используется для дальнейшей очистки нуклеиновых кислот от ЦТАБ и комплексов полисахарид/белок.
Окончательно нуклеиновые кислоты очищают путем осаждения изопропанолом и промывки этанолом.
А.3.1.4 Меры безопасности
Работы с органическими реактивами должны выполняться в вытяжном шкафу.
А.3.1.5 Реактивы
А.3.1.5.8 Протеиназа-К (при необходимости), приблизительно 20 ед./мг лиофилизата.
А.3.1.5.9 Рибонуклеаза-А, выделенная из бычьей поджелудочной железы, свободная от дезоксирибонуклеазы (при необходимости), приблизительно 50 ед./мг лиофилизата.
А.3.1.5.10 Хлорид натрия (NaCI).
А.3.1.5.11 Гидроксид натрия (NaOH).
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Хранить в аликвотах при температуре минус 20°С.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
А.3.1.6 Оборудование
Используется обычное лабораторное оборудование, в частности следующее.
А.3.1.6.1 Инкубатор, желательно с устройством для встряхивания (шейкер-инкубатор).
А.3.1.6.2 Центрифуга, например микроцентрифуга, обеспечивающая ускорение 12000 g. На некоторых стадиях анализа необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.3.1.6.3 Смеситель, например Vortex.
А.3.1.6.4 Вакуумная сушилка (при необходимости).
А.3.1.7 Методика
А.3.1.7.1 Общие положения
Сразу после приготовления навески пробы из исследуемого продукта (матрицы) необходимо выполнить описанную ниже процедуру экстрагирования и очистки ДНК.
При изменении размера навески пробы требуется соответственно масштабировать массы реактивов и объемы реактивов.
А.3.1.7.2 Экстрагирование пробы
Взвесить 200-300 мг соответствующим образом приготовленного материала в пробирке.
Центрифугировать в течение 15 мин при ускорении около 12000 g. Перенести верхнюю (водную) фазу в новую пробирку.
А.3.1.7.3 ЦТАБ-осаждение
Добавить 2 объема буфера ЦТАБ для осаждения (А.3.1.5.15). Инкубировать в течение 60 мин при комнатной температуре без перемешивания. Центрифугировать в течение 15 мин при ускорении 12000 g. Отбросить образовавшийся верхний слой. Растворить осажденную ДНК 350 мкл раствора NaCI (А.3.1.5.16). Добавить 350 мкл хлороформа (А.3.1.5.2) и тщательно перемешать. Центрифугировать в течение 10 мин при ускорении 12000 g. Перенести водную фазу в новую пробирку.
Примечание - ЦТАБ-осаждение является необходимым не для всех матриц, а только для тех, которые обогащены белками и полисахаридами. При обеспечении получения эквивалентных результатов возможна очистка ДНК альтернативным методом в твердой фазе (например, при использовании вращающихся колонок).
А.3.1.7.4 Осаждение ДНК
Добавить 0,6 объема изопропанола (А.3.1.5.7), осторожно перемешать путем переворачивания пробирки и выдержать ее при комнатной температуре в течение 20 мин. Центрифугировать в течение 15 мин при ускорении 12000 g. Отбросить образовавшийся верхний слой. Добавить 500 мкл раствора этанола (А.3.1.5.17) в пробирку и перемешать, переворачивая ее несколько раз. Эта стадия является важной для обеспечения полного удаления ЦТАБ. Центрифугировать в течение 10 мин при ускорении 12000 g. Отбросить образовавшийся верхний слой. Высушить осадок ДНК в пробирке после центрифугирования и повторно растворить его в 100 мкл воды или соответствующего буфера, например буфера ТЕ (А.3.1.5.20). Полученный раствор является основным раствором ДНК.
А.3.1.8 Перечень примеров
Метод был успешно применен для экстрагирования ДНК * из следующих матриц: порошкообразные продукты детского питания, продукты детского питания, смеси для хлебопекарного производства, сухое печение, бульонные кубики *, сладкие и кислые конфеты, консервированная кукуруза, крем-брюле *, кормовой жмых, зерно хлебных злаков (рис, пшеница, овес, рожь, гречиха, просо), плиточный шоколад *, шоколадный крем *, шоколадные конфеты *, печенье, глазированное шоколадом *, печенье, кукурузное пиво *, кукурузные хлопья *, десертный крем, декстроза *, начинка массы пралине, мелкие мучные кондитерские изделия, рыба *, рыбные палочки *, хлопья из цельной сои, замороженный картофель, жаренный кусочками, подливка из сока жареного мяса *, вареный окорок, мед *, кормовая мука быстрого приготовления, кукурузные початки, кукурузная мука, зародыши кукурузы *, кукурузный глютеновый корм, листья кукурузы, кукурузный нативный крахмал *, кукурузное масло (нативное) *, белки из кукурузы *, семена/зерна кукурузы, крупка из кукурузы, маргарин *, свежее мясо, сухое молоко, молоко, комбикорм для домашних животных, мюсли *, семена золотистой фасоли, листья горчицы, воздушная кукуруза (необработанная), хрустящий картофель, картофельный крахмал (нативный), клубни картофеля, листья рапса, рапсовый жмых, рапсовое масло (нерафинированное/нативное) *, семена рапса, необработанный соевый лецитин *, кормовая мука, готовая к употреблению, салями (с высоким содержанием жира), соленый сухой завтрак (из зерен кукурузы), колбасы, приправы *, модифицированные крахмалы (некоторые типы) *, сквашенные сливки с луком *, соевая мука, зародыши сои (консервированные, замороженные), соевый белок*, соевые напитки*, семена/зерна сои, соевый творог, соя (подкисленная) *, листья сахарной свеклы, семена сахарной свеклы, семена подсолнечника, рыбный фарш с соей *, сахарная кукуруза, шелуха тако, тарамас (паста из икры рыб), табак, томатный кетчуп *, томатный концентрат *, томаты (плоды), маисовые чипсы *, вегетарианский рубленый шницель, вафли *, пшеничный крахмал (нативный), йогурт *.
_______________
* Повторяемость может зависеть от различий в партии матрицы и/или технологии ее получения. В некоторых случаях ДНК может быть не обнаружена или она подверглась расщеплению таким образом, что результаты ПЦР оказываются ниже предела обнаружения метода независимо от используемых затравок (праймеров), протоколов ПЦР. Это может быть причиной низкой воспроизводимости результатов между лабораториями.
А.3.1.9 Валидация
Данные по валидации, приведенные в таблице А.5, были получены в результате совместного исследования, выполненного рабочей группой "Разработка методов идентификации пищевых продуктов, полученных с использованием способов генной инженерии" Комиссии Федерального управления по охране здоровья Германии для внедрения методов согласно статье 35 закона Германии о пищевых продуктах (см. [25]-[27]). В качестве испытуемых матриц использовались картофель, соя и томаты. При проведении этих межлабораторных испытаний масса пробы составляла 100 мг. Стадия ЦТАБ-осаждения была необходима для анализа сои и соевой муки. Стадии с использованием ферментов не проводились в этих межлабораторных испытаниях.
При проведении совместных исследований сои две из участвующих лабораторий использовали сильно измененные методики, а в одной лаборатории испытание пяти проб было прервано. Таким образом, 22 из 25 участников правильно идентифицировали все 110 проб.
При проведении межлабораторных испытаний картофеля три пробы дали ошибочные отрицательные результаты, а одна проба дала ошибочный положительный результат. Три пробы не были оценены из-за получения неоднозначных результатов двух повторных анализов.
Таблица А.5 - Данные по валидации
Матрица | Количество участвующих лабораторий | Количество проб на лабораторию | Общее количество проб | Количество правильно идентифицированных проб |
Соя [25] | 25 | 5 | 125 | 110 |
Картофель [26] | 18 | 10 | 180 | 173 |
Томаты [27] | 18 | 5 | 90 | 90 |
А.4 Получение ДНК, применимой для ПЦР, методами экстрагирования ДНК на основе диоксида кремния
А.4.1 Основной метод на основе диоксида кремния
А.4.1.1 Общие положения
Данный метод пригоден для экстрагирования ДНК из большой группы матриц (см. примеры в А.4.1.8). Этот метод также может применяться как метод дополнительной очистки растворов ДНК, полученных после экстрагирования ДНК другими методами.
Метод адаптирован к опубликованной процедуре [28]. В случае пригодности метода к соответствующей матрице продукта он имеет определенные преимущества, состоящие в том, что позволяет избегать использования очень токсичных реактивов. Кроме того, метод может быть легко адаптирован для выполнения ручных анализов высокой производительности и их автоматизации по причине отсутствия неустойчивых поверхностей раздела (например, вода - хлороформ) и необходимости центрифугирования с низкой скоростью.
Данный метод не рекомендуется для экстрагирования ДНК из матриц с высоким содержанием жира.
А.4.1.2 Статус валидации
Этот метод прошел внутрилабораторную проверку и используется для систематических анализов во многих лабораториях. Метод не подвергался оценке путем официальных межлабораторных сличений. Принцип этого метода положен в основу множества созданных наборов и тест-систем для экстрагирования ДНК, которые успешно прошли кольцевое тестирование (см. [29]-[31]).
А.4.1.3 Принцип
Метод состоит из стадии лизиса (термический лизис в присутствии додецилсульфата натрия в буферном растворе) и последующей стадии очистки с помощью смол из диоксида кремния в присутствии разобщающего агента, вызывающего диссоциацию комплексов, гуанидина гидрохлорида. Принцип метода состоит в связывании нуклеиновых кислот диоксидом кремния при низкой водной активности в результате энтропийного эффекта [32]. Загрязняющие примеси вымывают из смолы изопропанолом, в то время как ДНК остается прикрепленной. Во время заключительной стадии элюирования буферным раствором с низким содержанием соли извлекается ДНК.
А.4.1.4. Меры безопасности
Работы с органическими реактивами должны выполняться в вытяжном шкафу.
А.4.1.5 Реактивы
А.4.1.5.1 Хлорид натрия (NaCI).
А.4.1.5.5 Гидроксид натрия (NaOH).
А.4.1.5.7 Протеиназа К, приблизительно 20 ед./мг лиофилизата.
А.4.1.5.9 Хлорид калия (KCI).
_______________
* SIGMA S-5631 - пример подходящего коммерческого реактива. Эта информация приводится для удобства пользователей настоящего стандарта и не означает обязательное использование только этого реактива. Могут использоваться эквивалентные реактивы, если их применение приводит к тем же результатам.
А.4.1.5.14 Рибонуклеаза-А, свободная от дезоксирибонуклеазы, приблизительно 100 Kunitz ед./мг лиофилизата.
Растворяют фермент в стерильной воде или буфере, как описано в [34]. Раствор не автоклавировать. Хранить в аликвотах при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Автоклавировать не более 15 мин при температуре 121°С.
Автоклавировать не более 15 мин при температуре 121°С.
Довести значение рН до 7,5, используя HCI.
А.4.1.5.19 Суспензия диоксида кремния
Взвесить 5 г диоксида кремния (А.4.1.5.13) в пробирке вместимостью 50 мл и добавить 50 мл буфера PBS (А.4.1.5.18). Хорошо перемешать и оставить для осаждения на 2 ч. Удалить образовавшийся верхний слой путем отсасывания с помощью пипетки. Добавить еще 50 мл буфера PBS, хорошо перемешать и оставить для осаждения на 2 ч. Удалить образовавшийся верхний слой путем отсасывания. Центрифугировать в течение 2 мин при ускорении 2000 g. Отбросить верхний слой. После центрифугирования повторно растворить осадок в пробирке 50 мл раствора II гуанидина гидрохлорида (А.4.1.5.17). Использовать в течение 2-5 мес. Хорошо перемешивать перед использованием.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH, и автоклавировать перед добавлением SDS.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
Хранить в аликвотах при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
А.4.1.6 Оборудование
Используется обычное лабораторное оборудование, в частности следующее.
А.4.1.6.1 Центрифуга, обеспечивающая ускорение не менее 2000 g.
На некоторых стадиях анализа необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.4.1.6.2 Инкубатор с рабочей температурой 60°С.
А.4.1.6.3 Встряхиватель, который должен помещаться внутри инкубатора (шейкер-инкубатор).
А.4.1.6.4 Смеситель, например Vortex.
А.4.1.6.5 Пробирки для центрифугирования вместимостью 50 мл для приготовления суспензии диоксида кремния.
А.4.1.7 Методика
А.4.1.7.1 Общие положения
Сразу после приготовления пробы для анализа из исследуемого продукта (матрицы) необходимо выполнить описанную ниже процедуру экстрагирования и очистки ДНК.
При изменении размера навески пробы требуется соответственно масштабировать массы реактивов и объемы реактивов.
А.4.1.7.2 Методика экстрагирования
Обработать супернатант 2 мкл раствора рибонуклеазы (А.4.1.5.23) в течение 5 мин при температуре 37°С (эту стадию гидролизования РНК рекомендуется проводить перед стадией связывания диоксидом кремния, в противном случае гидролизованная РНК и полученные в результате нуклеотиды могут оказывать влияние на последующие измерения на ультрафиолетовом спектрометре). Добавить к этому слою 55 мкл раствора I гуанидина гидрохлорида (А.4.1.5.16) и 100 мкл суспензии диоксида кремния (А.4.1.5.19). Осторожно перемешать несколько раз. Оставить пробирки на лабораторном столе приблизительно на 1 мин.
Центрифугировать в течение 2 мин при ускорении около 800 g. Отбросить образовавшийся верхний слой и добавить 500 мкл раствора изопропанола (А.4.1.21). Закрыть пробирки и перемешать, желательно с помощью смесителя (А.4.1.6.4), для повторного полного растворения осадка после центрифугирования.
Центрифугировать в течение 2 мин при ускорении приблизительно 1500 g. Отбросить образовавшийся верхний слой и высушить осадок после центрифугирования. Добавить 100 мкл буферного раствора ТЕ (А.4.1.5.22). Осторожно перемешать для повторного растворения осадка после центрифугирования. Инкубировать при температуре 60°С в течение 5 мин. Центрифугировать в течение 5 мин при ускорении 2000 g. Перенести 80% образовавшегося верхнего слоя в новую пробирку. Необходимо соблюдать осторожность, чтобы не перенести частицы диоксида кремния, которые оказывают ингибирующее воздействие на ферменты (например, ДНК-полимеразы, эндонуклеазы).
Обработать перенесенный слой 2 мкл раствора рибонуклеазы (А.4.1.5.23) в течение 1 ч при температуре 37°С или в течение всей ночи при комнатной температуре. Этот раствор является основным раствором ДНК.
А.4.1.8 Перечень примеров
Метод был успешно применен для экстрагирования ДНК из следующих матриц: зародыши кукурузы *, кукурузная мука, кукурузный глютеновый корм *, листья кукурузы, модифицированный кукурузный крахмал *, нативный кукурузный крахмал *, семена кукурузы, кукурузная крупка, белок из сои *, соя, листья сои, сахарная свекла (свежие корнеплоды), сахарная свекла (замороженный жом), листья сахарной свеклы.
_______________
* Повторяемость может зависеть от партии матрицы и/или технологии ее получения. В некоторых случаях ДНК может быть не обнаружена или она подверглась расщеплению таким образом, что результаты ПЦР оказываются ниже предела обнаружения метода независимо от используемых затравок (праймеров), протоколов ПЦР. Это может быть причиной низкой воспроизводимости результатов между лабораториями.
А.5 Получение ДНК, применимой для ПЦР, методами экстрагирования ДНК на основе гуанидина-хлороформа
А.5.1 Основной метод на основе гуанидина-хлороформа
А.5.1.1 Общие положения
Данный метод пригоден для экстрагирования ДНК из большой группы матриц пищевых продуктов и кормов (см. А.5.1.8). В зависимости от состава пробы в некоторых случаях может потребоваться стадия дополнительной очистки.
А.5.1.2 Статус валидации
Этот метод был проверен с применением процедуры внутрилабораторной проверки.
А.5.1.3 Принцип
Метод заключается в термическом и ферментативном лизисе в присутствии додецилсульфата натрия в денатурирующем буферном растворе гуанидина. В некоторых случаях в зависимости от матрицы необходим дополнительный этап очистки.
Загрязняющие примеси, например липиды и белки, удаляются на стадии экстрагирования хлороформом после лизиса. Следующим этапом является осаждение ДНК изопропанолом.
А.5.1.4 Меры безопасности
Работы с органическими реактивами должны выполняться в вытяжном шкафу.
А.5.1.5 Реактивы
А.5.1.5.9 Протеиназа-К, приблизительно 20 ед./мг лиофилизата.
А.5.1.5.10 Рибонуклеаза-А, выделенная из бычьей поджелудочной железы, свободная от дезоксирибонуклеазы, приблизительно 50 Kunitz ед./мг лиофилизата.
А.5.1.5.11 Хлорид натрия (NaCI).
А.5.1.5.13 Гидроксид натрия (NaOH).
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
Автоклавировать после приготовления (не более 15 мин при температуре 121°С).
Не автоклавировать. Хранить при температуре минус 20°С, избегать многократного замораживания и оттаивания.
Хранить в аликвотах при температуре минус 20°С.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH.
А.5.1.6 Оборудование
А.5.1.6.1 Центрифуга, обеспечивающая ускорение 8000 g. На некоторых стадиях анализа необходимо использовать центрифугу с охлаждением.
А.5.1.6.2 Инкубатор, желательно с устройством для встряхивания (шейкер-инкубатор).
А.5.1.6.3 Смеситель, например Vortex.
А.5.1.7 Методика
А.5.1.7.1 Общие положения
Сразу после приготовления навески пробы из исследуемого продукта (матрицы) необходимо выполнить описанную ниже процедуру экстрагирования и очистки ДНК.
При изменении размера навески пробы требуется соответственно масштабировать массы реактивов и объемы реактивов.
А.5.1.7.2 Методика экстрагирования
Взвесить 200-500 мг измельченного материала в микропробирке. Добавить 1,6 мл предварительно нагретого буфера для экстрагирования (А.5.1.5.17).
Добавить 20 мкл раствора протеиназы-К (А.5.1.5.19), плавно перемешать, переворачивая пробирку вручную, и инкубировать не менее 2 ч при температуре 60°С при умеренном перемешивании. Оставить пробирки на лабораторном столе на 15 мин, затем центрифугировать в течение 15 мин при ускорении 8000 g.
Перенести образовавшийся верхний слой в новую пробирку. Добавить 1 объем хлороформа (А.5.1.5.3) и перемешать с помощью смесителя (А.5.1.6.3). Центрифугировать в течение 15 мин при ускорении 8000 g. Перенести образовавшийся верхний слой в новую пробирку. Добавить 0,6 объема изопропанола (А.5.1.5.8), перемешать путем переворачивания. Оставить пробирки на льду на 50 мин.
Центрифугировать в течение 20 мин при ускорении 8000 g. Промыть осадок после центрифугирования не менее чем 2 мл раствора этанола (А.5.1.5.16) и центрифугировать в течение 10 мин при ускорении 8000 g. Эта стадия является важной для удаления любых солей, которые могут оказывать влияние на последующий анализ (например, ПЦР). Отбросить образовавшийся верхний слой. Высушить осадок после центрифугирования и повторно растворить его в 100 мкл воды или соответствующего буфера, например буфера ТЕ (А.5.1.5.21). Этот раствор является основным раствором ДНК. Если потребуется дополнительная стадия очистки, то ее необходимо выполнять на основном растворе ДНК.
А.5.1.8 Перечень примеров
Метод был успешно применен для экстрагирования ДНК * из следующих матриц: подкисленная соя, консервированная кукуруза, кормовой жмых, плиточный шоколад *, десертный крем *, хлопья из цельной сои, початки кукурузы, кукурузная мука, зародыши кукурузы *, кукурузный глютеновый корм *, модифицированный кукурузный крахмал *, белки из кукурузы *, семена/зерна кукурузы, кукурузная крупка, нативный кукурузный крахмал *, семена/зерна рапса, соусы *, мука из сои, соевый творог, соевый лецитин (необработанный коричневый * и рафинированный желтый *), белок из сои, семена/зерна сои, маисовые чипсы *.
_______________
* Повторяемость может зависеть от партии матрицы и/или технологии ее получения. В некоторых случаях ДНК не может быть обнаружена или она подверглась расщеплению таким образом, что результаты ПЦР оказываются ниже предела обнаружения метода независимо от используемых затравок (праймеров), протоколов ПЦР. Это может быть причиной низкой воспроизводимости результатов между лабораториями.
Данный метод непригоден для анализа проб масел, мальтодекстрина, D-глюкозы, мальтита, маннита или ксилита массой 1 г.
Приложение В
(обязательное)
Методы количественной оценки экстрагированной ДНК
В.1 Основной метод ультрафиолетовой спектрометрии
В.1.1 Общие положения
В настоящем приложении описывается систематический метод определения концентрации ДНК в растворах.
В.1.2 Статус валидации
Этот метод был проведен путем кольцевого тестирования, результаты были опубликованы [35]. Например, метод был успешно применен при межлабораторных сличениях по обнаружению ГМО, организованных Федеральным министерством общественного здравоохранения в Берне и кантональными лабораториями Базеля и Цюриха (Щвейцария).
В.1.3 Принцип
Нуклеиновые кислоты в растворе поглощают ультрафиолетовый (УФ) свет в диапазоне 210-300 нм с максимумом поглощения на длине волны 260 нм. Поскольку ДНК, РНК и нуклеотиды имеют максимум поглощения на длине волны 260 нм, то загрязнение растворов ДНК и РНК нуклеотидами не может быть определено УФ-спектрометрией. По этой причине до определения ДНК необходимо ферментативно удалить РНК во время экстрагирования ДНК. Также необходимо удалить олигонуклеотиды и нуклеотиды, полученные при гидролизе РНК (например, обработкой диоксидом кремния, как указано в А.4.1.7.2). Если не удалить образованные при обработке рибонуклеазой олигонуклеотиды и нуклеотиды (например, обработкой диоксидом кремния), это может привести к завышению содержания ДНК в пробе. Кроме того, двухцепочечная ДНК абсорбирует меньше УФ-света по сравнению с одноцепочечной ДНК. Поскольку доля одноцепочечной ДНК в растворе неизвестна, то, чтобы избежать завышения содержания ДНК, вся ДНК в испытуемой пробе превращается в одноцепочечную форму путем использования гидроксида натрия в качестве денатурирующего агента. Так как нуклеиновые кислоты не поглощают на длине волны 320 нм, показание на этой длине волны является информативным для определения фонового поглощения в результате рассеяния света и присутствия УФ-активных компонентов.
Построение калибровочного графика не является обязательным при условии, что соответствующий молярный коэффициент экстинкции выбран в зависимости от типа исследуемой нуклеиновой кислоты и/или ее целостности.
Однако необходимо периодически проверять калибровку спектрометра путем измерения концентрации эталонных растворов ДНК.
В.1.4 Область применения
Метод применим к концентрациям ДНК в диапазоне от 2 до 50 мкг/мл. Перед количественным анализом необходимо сделать соответствующие разбавления экстрагированной ДНК, подлежащей количественному определению, чтобы ее концентрация находилась в линейном диапазоне спектрометрического измерения (оптическая плотность - между 0,05 и 1).
Примечание - Следует учитывать, что остаточные соединения (например, ЦТАБ, оставшийся в результате процедуры экстрагирования ДНК) могут оказывать негативное влияние на УФ-спектрометрическое обнаружение на длине волны 260 нм. Это связано с тем, что данные соединения также поглощают на этой длине волны.
В.1.5 Реактивы
В.1.5.2 Гидроксид натрия (NaOH).
В.1.5.4 ДНК-носитель, например ДНК* спермы сельди или вилочковой железы телят.
_______________
* Эти продукты имеются в Sigma как D-7290 и D-1501 соответственно. Эта информация приводится для удобства пользователей настоящего стандарта и не означает обязательное применение данных реактивов. Могут использоваться эквивалентные реактивы, если их применение приводит к тем же результатам.
В.1.5.5 Эталонный раствор ДНК
Приготовить основной раствор ДНК концентрацией 10 мг/мл, растворив 100 мг ДНК-носителя (В.1.5.4) в 10 мл буфера для разбавления (В.1.5.7). ДНК растворяется при этой концентрации очень медленно, и конечный раствор очень вязкий. Затем разбавить этот приготовленный основной эталонный раствор ДНК буфером для разбавления до требуемой рабочей концентрации (например, 25 мкг/мл).
Довести значение рН до 9,0, используя HCI.
В.1.6 Оборудование
В.1.6.1 УФ-спектрометр, допускаются одно-, двулучевые или фотодиодные приборы.
В.1.6.2 Смеситель, например Vortex.
В.1.6.3 Сосуды для измерения, например кварцевые или пластмассовые кюветы или пластиковые ячейки (планшеты), пригодные для УФ-обнаружения на длине волны 260 нм.
Размер используемых сосудов для измерения определяется объемом раствора для измерения: полумикрокюветы - 1000 мкл, микрокюветы - 400 мкл, ультрамикрокюветы - 100 мкл, кварцевые капилляры 3-5 мкл. Оптический путь стандартной кюветы составляет обычно 1 см.
В.1.7 Методика
В.1.7.1 Измерение эталонного раствора ДНК
Для обеспечения правильной калибровки спектрометр проверяют путем проведения следующих измерений с использованием эталонного раствора ДНК:
- при измерении фона (контрольного раствора) измерительный сосуд заполнить только буфером для разбавления (В.1.5.7);
- при измерении эталонного раствора измерительный сосуд заполнить эталонным раствором ДНК (В.1.5.5).
Поглощение как контрольного раствора, так и эталонного раствора ДНК измеряют для обоих случаев на длинах волн 260 и 320 нм.
В.1.7.2 Измерение испытуемого раствора ДНК неизвестной концентрации
Для приготовления контрольного раствора смешать буфер для разбавления (В.1.5.7) с раствором гидроксида натрия (В.1.1.5.13) таким образом, чтобы была достигнута конечная концентрация NaOH 0,2 моль/л. Этой смесью заполнить измерительный сосуд.
Смешать испытуемый раствор ДНК с раствором гидроксида натрия, чтобы получить конечную концентрацию NaOH 0,2 моль/л (в случае необходимости смешать и с буфером для разбавления). Этой смесью заполнить измерительный сосуд.
Выдержать как контрольный раствор, так и эталонный раствор ДНК в течение 1 мин и провести измерения на длинах волн 260 и 320 нм. Показание устойчиво в течение не менее 1 ч.
Пример 1 - Для приготовления контрольного раствора смешать 90 мкл буфера для разбавления и 10 мкл раствора гидроксида натрия и перенести в измерительный сосуд вместимостью 100 мкл.
Пример 2 - Для приготовления испытуемого раствора ДНК смешать 80 мкл буфера для разбавления или воды, 10 мкл раствора гидроксида натрия и 10 мкл раствора ДНК неизвестной концентрации и перенести в измерительный сосуд вместимостью 100 мкл.
В.1.8 Оценка значения
Для фона вычесть значение поглощения (оптической плотности) OD на длине волны 320 нм из значения поглощения на длине волны 260 нм, получая исправленное значение поглощения на 260 нм.
Если исправленное значение OD на 260 нм равняется 1, то расчетная концентрация ДНК составляет 50 мкг/мл для двухцепочечной ДНК или 37 мкг/мл для одноцепочечной ДНК (например, денатурированной гидроксидом натрия) соответственно.
Для получения достоверных измерений значения OD на длине волны 260 нм должны быть более 0,05.
Массовая концентрация испытуемого раствора двухцепочечной ДНК с учетом денатурации и используемого коэффициента разбавления рассчитывается по формуле (1)
37 - переводной коэффициент, мкг/мл.
В.2 Метод электрофореза в агарозном геле и окрашивания бромистым этидием
В.2.1 Общие положения
В настоящем приложении описывается систематический метод определения концентрации ДНК в растворах. Электрофорез ДНК в агарозном геле и окрашивание бромистым этидием (EtBr) позволяют оценить количество ДНК и в то же время проанализировать ее физическое состояние (например, степень деградации, присутствие остаточной РНК и некоторых загрязнителей). Метод также применяется в случаях, если имеется недостаточное количество ДНК для спектрометрического обнаружения или если ДНК недостаточно очищена и может содержать вещества, которые поглощают ультрафиолетовое излучение [36]. Электрофорез в геле обычно не рекомендуется применять для количественного определения ДНК в том случае, если она подверглась деградации. В этом случае следует применять другие методы.
В.2.2 Статус валидации
Этот метод на протяжении многих лет широко применялся при различных исследованиях, однако никогда не проверялся при межлабораторных исследованиях по обнаружению ГМО в пищевых продуктах.
В.2.3 Принцип
ДНК загружается на молекулярное сито (агарозный гель) и подвергается воздействию электрического поля в присутствии буферного раствора [37]. С помощью электрофореза ДНК разделяется в зависимости от ее заряда и молекулярной массы.
EtBr интеркалирует в ДНК и при возбуждении ультрафиолетовым светом излучает оранжевую флуоресценцию. Поскольку величина флуоресценции пропорциональна общей массе ДНК, то количество ДНК в пробе можно оценить путем сравнения флуоресценции, излучаемой неизвестной пробой, с флуоресценцией, излучаемой набором эталонных растворов ДНК с известным количеством ДНК. Молекулярная масса таких стандартов должна быть аналогична молекулярной массе ДНК, подлежащей количественному анализу, так как интеркалирование EtBr и возникающее в результате него излучение флуоресценции также зависят от длины фрагментов ДНК. EtBr также окрашивает одноцепочечную ДНК и РНК. Для более точной оценки содержания ДНК необходимо с помощью ферментов удалить одноцепочечную ДНК и РНК.
В.2.4 Область применения
Метод применим к концентрациям ДНК в приблизительном диапазоне от 5 до 500 нг при использовании систем регистрации фотоизображений. Системы видеодокументации с камерой CCD могут обеспечить более высокую чувствительность.
В.2.5 Меры безопасности
Поскольку EtBr является мощным мутагеном и канцерогеном, при обращении с ним следует соблюдать меры предосторожности. Обязательным требованием является использование перчаток. Все растворы и гели, содержащие EtBr, перед выбросом и удалением необходимо подвергать дезактивации (см. [36]).
УФ-излучение особенно опасно для сетчатой оболочки глаза. При работе с УФ-излучением всегда необходимо надевать защитные очки или защитную маску.
В.2.6 Реактивы
Электрофорез в агарозном геле может выполняться с применением как буфера ТАЕ, так и буфера ТВЕ.
Применение этого метода не требует наличия реактивов степени чистоты, применяемой в молекулярной микробиологии. Используемые в данном методе растворы обычно не нуждаются в автоклавировании.
В.2.6.1 Агароза, пригодная для электрофореза ДНК и разделения молекул ДНК предполагаемого размера.
В.2.6.4 Стандарт количества ДНК соответствующей молекулярной массы (линейная ДНК фага Лямбда для высокомолекулярных масс ДНК и подвергшаяся рестрикции низкомолекулярная ДНК фага Лямбда для низкомолекулярных масс ДНК).
В.2.6.5 Стандарт молекулярной массы ДНК, например коммерческий препарат, содержащий фрагменты ДНК от очень высокой до очень низкой молекулярной массы.
В.2.6.12 Гидроксид натрия (NaOH).
Довести значение рН до 8,0 ледяной уксусной кислотой или NaOH. Целесообразно готовить буферный раствор ТАЕ в виде концентрированного основного раствора (максимум 50-кратной концентрации). Не использовать буфер при появлении видимого осадка. Разбавление концентрированных буферных растворов для электрофореза нестерильной, однократно перегнанной или деионизированной водой может выполняться непосредственно перед их использованием.
Довести значение рН до 8,0, используя HCI или NaOH. Целесообразно готовить буферный раствор ТВЕ в виде концентрированного основного раствора (максимум 10-кратной концентрации). Не использовать буфер при появлении видимого осадка. Разбавление концентрированных буферных растворов для электрофореза нестерильной, однократно перегнанной или деионизированной водой может выполняться непосредственно перед их использованием.
Целесообразно хранить раствор бромистого этидия в виде концентрата (например, 10 мг/мл) при температуре 5°С в темноте (EtBr чувствителен к свету). Также желательно избегать взвешивания EtBr. Основной раствор необходимо готовить путем растворения порошка EtBr, уже находящегося в сосуде, соответствующим количеством воды или применяя предварительно взвешенные таблетки EtBr. Растворение EtBr следует выполнять в месте, защищенном от света, перемешивать при комнатной температуре. Обычно это занимает приблизительно 1 ч.
В.2.7 Оборудование
В.2.7.1 Микроволновая печь или кипящая водяная баня
В.2.7.2 Оборудование для электрофореза в агарозном геле со вспомогательными принадлежностями и источником питания.
В.2.7.3 Ультрафиолетовый трансоблучатель или лампа, предпочтительно с длиной волны 312 нм.
Альтернативно могут использоваться оборудование для колоночной хроматографии нуклеиновых кислот и соответствующая система обнаружения или другие аналогичные системы.
В.2.7.4 Регистрирующий прибор, например система фотодокументации с пленкой 3000 ASA и УФ-фильтром, соответствующим флуоресценции, излучаемой EtBr.
Альтернативно могут использоваться система видеодокументации с камерой CCD, соответствующий УФ-фильтр и (при необходимости) программное обеспечение количественного анализа.
В.2.8 Методика
В.2.8.1 Общие положения
Электрофорез в агарозном геле может выполняться с применением как буфера ТАЕ, так и буфера ТВЕ. Допускается использовать один и тот же буфер для растворения агарозы и заполнения ячейки для электрофореза.
В.2.8.2 Приготовление агарозного геля
Гель должен быть не толще 1 см.
Концентрация агарозы и ее качество определяют разрешающую способность геля. Для количественного анализа ДНК с высокой молекулярной массой используются концентрации агарозы от 8 до 10 г/л. Для количественного анализа ДНК с низкой молекулярной массой (например, деградированной или подвергнутой действию рестриктазы) используются более высокие концентрации агарозы (до 40 г/л) [38].
Взвесить соответствующее количество агарозы (В.2.6.1) и добавить ее в буферный раствор для электрофореза (В.2.6.14 или В.2.6.15). Кипятить раствор в микроволновой печи или водяной бане (В.2.7.1) до полного растворения агарозы. Дополнить объем, потерянный в результате выпаривания, эквивалентным количеством воды, перемешать при взбалтывании (избегать захвата пузырьков воздуха), охладить раствор до температуры приблизительно 60°С и выдержать его при этой температуре до использования. Приготовить гелевую подложку (лоток для геля) с соответствующей гребенкой для пробы, расположенной в правильном положении. Налить раствор агарозы на гелевый лоток и дать возможность гелю загустеть при комнатной температуре (обычно рекомендуется в течение 1 ч).
В.2.8.3 Приготовление пробы ДНК
Смешать растворы пробы ДНК (например, 5-10 мкл) с приблизительно 20% (относительно окончательного объема пробы) буфера для загрузки (В.2.6.16) (например, добавляют 2,5 мкл буфера для загрузки к 10 мкл пробы ДНК), перемешать и внести смесь в лунки (гнезда) для пробы с помощью микропипетки. Если предполагается, что неизвестные пробы будут очень концентрированными, то необходимо разбавить их перед загрузкой в гель.
Для определения размера экстрагированных фрагментов ДНК добавить буфер для загрузки пробы (В.2.6.16) (в соотношении 20% относительно объема пробы) к соответствующему количеству стандарта молекулярной массы ДНК (В.2.6.5) и провести электрофорез параллельно.
Для оценки концентрации неизвестной пробы параллельно должны анализироваться стандартные пробы количества ДНК. Такие пробы содержат известные количества стандарта ДНК (В.2.6.4) (в пределах динамической области применения метода, т.е. от 5 до 500 нг), разбавленного водой или буфером для электрофореза (В.2.6.14 или В.2.6.15). Рекомендуется использовать стандарты количества, содержащие по меньшей мере 5 калибровочных точек (т.е. различные количества ДНК).
В.2.8.4 Проведение электрофореза
Осторожно вынуть гребенку для проб из геля. Перенести гель (вместе с лотком) в ячейку для электрофореза таким образом, чтобы лунки находились как можно ближе к катоду (отрицательному электроду). Заполнить ячейку буфером для электрофореза (В.2.6.14 или В.2.6.15). Покрыть гель слоем того же буфера толщиной 2 мм и загрузить пробы с помощью микропипетки.
Выполнить электрофорез при комнатной температуре при соответствующем напряжении и энергоемкости (обычно рекомендуется максимальное неизменное напряжение 5 В/см для расстояния между электродами). В указанных условиях ДНК имеет отрицательный заряд, поэтому она мигрирует от катода к аноду. Время электрофореза зависит от требуемого расстояния миграции, тока, вырабатываемого источником энергии, электроэндоосмоса и концентрации агарозы в геле.
В.2.8.5 Окрашивание
После завершения электрофореза выдержать гель в течение 15-50 мин в растворе бромистого этидия (В.2.6.17) при комнатной температуре, если возможно, в темноте (и/или в сосуде из нержавеющей стали с крышкой), осторожно встряхивая.
При необходимости уменьшения фонового окрашивания необходимо поместить гель в воду на 10-30 мин.
Как вариант можно добавлять EtBr к гелю перед его разливом. В этом случае добавляют EtBr к гелю до конечной концентрации 0,01 мг на миллилитр геля, охлажденного до температуры 60°С.
Если гель разливается вместе с бромистым этидием, загрузить неизвестную пробу и стандарт количества ДНК (В.2.6.4) в отдельные лунки, образованные той же гребенкой на том же геле. Иначе количество бромистого этидия будет различным для пробы и стандарта, что приведет к ошибочным результатам количественного анализа. Чтобы свести к минимуму проблемы, связанные с движением EtBr в геле, некоторое количество EtBr может быть также добавлено к буферу для электрофореза (в ячейку). После электрофореза в геле обычно не требуется проведение стадии удаления окрашивания.
В данном случае после окончания электрофореза удаление окрашивания обычно не проводится.
В.2.8.6 Регистрация геля
Перенести гель на поверхность трансоблучателя, включить УФ-свет и зарегистрировать флуоресценцию ДНК с помощью фото- или видеозаписи.
В.2.9 Оценка/интерпретация результатов
Оценить содержание ДНК в пробе, сравнивая неизвестные пробы с пробами стандартного количества ДНК, которые подвергаются электрофорезу параллельно. Эта оценка может выполняться визуально или с помощью программного обеспечения количественного анализа, пригодного для расчета адекватной калибровочной кривой.
В.3 Метод ПЦР в реальном времени для количественного анализа экстрагированной ДНК
При экстрагировании матриц с низким содержанием ДНК количественный анализ полученной ДНК не всегда возможно провести обычными физическими методами (например, методами, описанными в настоящем приложении) по причине их недостаточной чувствительности. Если необходим такой количественный анализ, то можно использовать метод ПЦР в реальном времени. Этот метод также дает информацию относительно способности применения экстрагированных молекул ДНК для ПЦР, которую нельзя получить путем выполнения физических измерений концентраций ДНК. Более подробно метод описан в ISO 21570.
Библиография
[1] | Ausubel, F.M., Brent, R., Kingston, R.E., Moore, D.D., Seidman, JG., Smith, JA., Struhl, K.: Current Protocols in Molecular Biology. John Wiley & Sons (1988) (ISBN 0-471-50338-X) | |
| (Современные методы в молекулярной биологии) | |
[2] | Sambrook, J., Russel D. "Molecular Cloning, a Laboratory Manual" 3  Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, NY (2001) (ISBN 0-87969-576-5) | |
| (Клонирование молекул нуклеиновых кислот. Лабораторное пособие) | |
[3] | Sambrook, J., Fritsch, E.F., Maniatis, Т. Molecular Cloning, a Laboratory Manual. 2  Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1987) ISBN 0-87969-309-6 | |
| (Клонирование молекул нуклеиновых кислот. Лабораторное пособие) | |
[4] | Prokisch, J.Zeleny, R., Trapmann, S., Le Guern, L., Schimmel, H., Kramer, G.N., Pauwels, J. Estimation of the minimum uncertainty of DNA concentration in a genetically modified maize sample candidate certified reference material. Fresenuis J. Analy. Chem. (2001) 370(7) pp.935-9 | |
| (Оценка минимальной неопределенности измерений концентрации ДНК в пробе генетически модифицированной кукурузы, аттестуемой в качестве стандартного образца) | |
[5] | Sambrook, J., Fritsch, E.F. and Maniatis, T. In: Molecular Cloning: a Laboratory Manual. 2 ed. Vol.3, Appendix E.3, Purification of nucleic acids (1987) (ISBN 0-87969-309-6) | |
| (Клонирование молекул нуклеиновых кислот. Лабораторное пособие) | |
[6] | Detection of a genetic modification of Lactobacillus curvatus in uncooked-meat sausage by amplification of the modified DNA sequence using the polymerase chain reaction (PCR) and hybridization of the PCR product with a DNA probe. L 08.00-44 In: Collection of official methods under article 35 of the German Federal Foods Act; Methods of sampling and analysis of foods, tobacco products, cosmetics and commodity goods. Federal Health Office, September 1998, revised version: state 05/2001; Berlin,  , Beuth Verlag GmbH | |
| (Обнаружение генетической модификации Lactobacillus curvatus в колбасе из мясного фарша, не подвергнутого тепловой обработке, путем амплификации модифицированной последовательности ДНК с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР) и гибридизации продукта ПЦР с пробой ДНК. L 08.00-44) | |
[7] | Straub, J.A., Hertel, С. and Hammes, W.P. The fate of recombinant DNA in thermally treated fermented sausages. Eur. Food Res. Technol. (1999) 210, pp.62-67 | |
| (Обнаружение рекомбинированной ДНК в колбасах, подвергнутых ферментации и термической обработке) | |
[8] | Straub, J.A., Hertel, С. and Hammes, W.P. A 23S rDNA-targeted polymerase chain reaction-based system for detection of Staphyioccus aureus in meat starter cultures and dairy products. J. Food Protect. (1999) 62, pp.1150-1156 | |
| (Система обнаружения Staphyloccus aureus в заквасочных культурах мясной продукции и в молочной продукции, основанная на обнаружении 23S рДНК путем полимеразной цепной реакции) | |
[9] | Lick, S., Keller, М., Bockelmann, W., Heller, K.J. Optimized DNA extraction method for starter cultures from yoghurt. Milk Sci. Int. (1998) 51, pp.183-186 | |
| (Оптимизированный метод экстрагирования ДНК из заквасочных культур йогурта) | |
[10] | Lick, S., Heller, K.J. Quantitation by PCR of yoghurt starters in a model yoghurt produced with a genetically modified Streptococcus thermophilus. Milk Sci. Int. (1998) 53, pp.671-675 | |
| (Количественное определение методом ПЦР заквасочных культур в йогурте, приготовленном с использованием генетически модифицированного Streptococcus thermophilus) | |
[11] | Detection of a genetic modification of Streptococcus thermophilus in yoghurt by amplification of the modified DNA sequence by means of the polymerase chain reaction (PCR) and hybridization of the PCR product with a DNA probe. L 02.02-4 In: Collection of official methods under article 35 of the German Federal Foods Act; Methods of sampling and analysis of foods, tobacco products, cosmetics and commodity goods. Federal Health Office, September 1998, revised version: state 05/2001; Berlin, , Beuth Verlag GmbH | |
| (Обнаружение генетической модификации Streptococcus thermophilus в йогурте путем амплификации модифицированной последовательности ДНК с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) и гибридизации продукта ПЦР с пробой ДНК. L 02.02-4) | |
[12] | Lick, S., Keller, М., Krusch, U., Heller, K.J. Identification of starter cultures in thermally treated plain yoghurt using geneprobes and PCR. J. Dairy Res. (1998) 63, pp.607-613 | |
| (Идентификация заквасочных культур в обычном йогурте, подвергнутом термической обработке, используя генопробы и ПЦР) | |
[13] | Van Vaerembergh, В., Grootaert, В., Moens, W. Validation of a method for the preparation of fungal genomic DNA for Polymerase chain reaction (PCR) and Random Amplification of Polymorphic DNA (RAPD). J. Mycol.  . (1995) 5, pp.133-139 | |
| [Валидация метода подготовки геномной ДНК грибков к полимеразной цепной реакции (ПЦР) и случайной амплификации полиморфной ДНК (RAPD)] | |
[14] | Haynes, K.А., Westerneng, Т.J., Fell, J.W., Moens, W. Rapid detection and identification of pathogenic fungi by polymerase chain amplification of large subunit ribosomal DNA. J. Med.& Vet. Mycology (1995) 33, pp.319-325 | |
| (Быстрое обнаружение и идентификация патогенных грибов путем амплификации рибосомной ДНК, состоящей из больших субъединиц методом полимеразной цепной реакции) | |
[15] | Guillaume, G.: Verbrugge, D., Chasseur-Libotte, M-L, Moens, W., Collard, J-M.: PCR typing of tetracycline determinants (Tet A-E) in Salmonella enterica Hadar and in the microbial community of activated sludges from hospital and urban wastewater treatment facilities in Belgium. In: FEMS Microbiology Ecology, 2000, 32, pp.77-85 | |
| (Типирование определителей тетрациклина (Tet A-E) методом ПЦР в Salmonella enterica Hadar и в микробном сообществе активного ила, отобранного на станциях по очистке сточных вод больниц и городских предприятий Бельгии) | |
[16] | Pedersen, L.H., Skouboe, P., Boysen, M., Soule, J., Rossen, L.: Detection of Penicillium species in complex food samples using the polymerase chain reaction, Int J Food Microbiol, 1997, 35(2), pp.169-77 | |
| (Обнаружение видов Penicillium в пробах пищевых продуктов со сложной матрицей, используя полимеразную цепную реакцию) | |
[17] | Moens, W., Methodology for the fast design of fungal DNA probes and PCR primers. In: A.Vassaroti and U.Kircheim (Ed.) Biotechnology Research for Innovation, Development and Growth in Europe, ECSC-EC-EAEC Brussels, 1992, pp.421-426 | |
| (Методология быстрой разработки проб ДНК грибков и затравок ПЦР) | |
[18] | Haugland, R.A., Heckman, J.L., Wymer, L.J. Evaluation of differents methods for the extraction of fungal conidia by quantitative competitive PCR analysis. In: J.Microbiol. Methods, 1999, 37(2), pp.165-176 | |
| (Оценка различных методов экстрагирования конидий грибов путем количественного конкурентного анализа ПЦР) | |
[19] | Kim, C.S., Lee, С.Н., Shin, J.S., Chung, Y.S., and Hyung, N.I. A simple and rapid method for isolation of high quality genomic DNA from fruit trees and conifers using PVP. Nucleic Acids Research, 1997, 25, No. 5, pp.1085-1086 | |
| (Простой и быстрый метод выделения высококачественной геномной ДНК из плодовых и хвойных деревьев с использованием ПВП) | |
[20] | Berthelet, M., Whyte, L.G., and Greer, С.W.: Rapid, direct extraction of DNA from soils for PCR analysis using polyvinylpolypyrrolidone spin columns. FEMS Microbiology Letters, 1996, 138, pp.17-22 | |
| (Быстрое, прямое экстрагирование ДНК из почв для выполнения анализа ПЦР с использованием вращающейся колонки из поливинилполипирролидона) | |
[21] | Petit, F., Craquelin, S., Guespin-Michel, J., and Buffet-Janvresse, С. Nucleic acid extraction from polluted estuarine water for detection of viruses and bacteria by PCR and RT-PCR analysis. Res. Microbiol., 1999, 150, pp.143-151
| |
| (Экстрагирование нуклеиновых кислот из загрязненной речной воды для обнаружения вирусов и бактерий путем анализа ПЦР и РТ-ПЦР) | |
[22] | Watson, R.J., and Blackwell, В.: Purification and characterization of a common soil component which inhibits the polymerase chain reaction. Can J. Microbiol., 2000, 46, pp.633-642 | |
| (Очистка и охарактеризование общего компонента почв, который ингибирует полимеразную цепную реакцию) | |
[23] | Griffiths, R.J., Whiteley, A.S., O’Donnell, A.G., and Bailey, M.J.: Rapid Method for Coextraction of DNA and RNA from Natural Environments for Analysis of Ribosomal DNA- and rRNA-Based Microbial Community Composition. Appl. Environ. Microbiol., 2000, 66, No. 12, pp. 5488-5491 | |
| (Экспресс-метод объединенного экстрагирования ДНК и РНК из проб естественной окружающей среды для выполнения анализа состава микробных сообществ на основе метода рибосомной ДНК и рРНК) | |
[24] | Rogers, S.O. and Bendich, A.J. Extraction of DNA from plant tissues. Plant Molecular Biology Manual A6 (1988) pp.1-10 | |
| (Экстрагирование ДНК из ткани растений. Руководство N А 6 по молекулярной биологии растений) | |
[25] | Analysis of foodstuffs: Detection of a genetic modification of soya beans by amplification of the modified DNA sequence using the polymerase chain reaction (PCR) and hybridisation of the PCR product with a DNA probe. L 23.01.22-1, March 1998. In: Amtliche Sammlung von Untersuchungsverfahren nach § 35 LMBG; Verfahren zur Probenahme und Untersuchung von Lebensmitteln, Tabakerzeugnissen, kosmetischen Mitteln und  / BgVV (In: Official Collection of methods under article 35 of the German Federal Food Act; Methods of sampling and analysis of foods, tobacco products, cosmetics and commodity goods/BgW). March 1998 Bd. 1 1999-03 Vol.1) Berlin, : Beuth Verlag GmbH | |
| (Анализ пищевой продукции. Обнаружение генетической модификации сои путем амплификации модифицированной последовательности ДНК с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР) и гибридизации продукта ПЦР с пробой ДНК. L 23.01.22-1) | |
[26] | Analysis of foodstuffs: Detection of a genetic modification of potatoes by amplification of the modified DNA sequence using the polymerase chain reaction (PCR) and hybridization of the PCR product with a DNA probe. L 24.01-01, February 1996, revised in January 1997. In: Amtliche Sammlung von Untersuchungsverfahren nach § 35 LMBG; Verfahren zur Probenahme und Untersuchung von Lebensmitteln, Tabakerzeugnissen, kosmetischen Mitteln und / BgVV (In: Official Collection of methods under article 35 of the German Federal Food Act; Methods of sampling and analysis of foods, tobacco products, cosmetics and commodity goods/BgVV). Jan 1997 Bd. 1 (1997-01 Vol.1) Berlin, : Beuth Verlag GmbH | |
| (Анализ пищевой продукции. Обнаружение генетической модификации картофеля путем амплификации модифицированной последовательности ДНК, используя полимеразную цепную реакцию (ПЦР) и гибридизацию продукта ПЦР с пробой ДНК. L 24.01.01) | |
[27] | Analysis of foodstuffs: Detection of a genetic modification of tomatoes bean by amplification of the modified DNA sequence by means of the polymerase chain reaction (PCR) and hybridisation of the PCR product with a DNA probe. L 25.03.01-1, November 1999. In: Amtliche Sammlung von Untersuchungsverfahren nach § 35 LMBG; Verfahren zur Probenahme und Untersuchung von Lebensmitteln, Tabakerzeugnissen, kosmetischen Mitteln und / BgVV (In: Official Collection of methods under article 35 of the German Federal Food Act; Methods of sampling and analysis of foods, tobacco products, cosmetics and commodity goods/BgW). Nov 1999 Bd. 1 (1999-11 Vol.1) Berlin, : Beuth Verlag GmbH | |
| (Анализ пищевой продукции. Обнаружение генетической модификации помидоров путем амплификации модифицированной последовательности ДНК с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР) и гибридизации продукта ПЦР с пробой ДНК. L 25.03.01-1) | |
[28] | Boyle, J.S., and Lew, A.M. An inexpensive alternative to glassmilk for DNA purification, Trends in Genetics, Vol. 11(1), p.8, 1995 | |
| (Недорогая альтернатива микропористому стеклу для очистки ДНК) | |
[29] | Brodmann, P., Eugster, A., Hubner, Ph., Meyer, R., Pauli, U.,  , U. and  , J. Nachweis gentechnisch  Roundup Ready ™ Sojabohnen mittels der Polymerase - Kettenreaktion (PCR).  im Rahmen der Subkommission 29a des Schweizerischen Lebensmittelbuches. Mitt. Gebiete Lebensm. Hyg. 1997, 88, pp.722-731 | |
| [Обнаружение генетически модифицированной сои с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР)] | |
[30] |  , P., Studer, Е., and , J. Quantitative Competitive PCR for the Detection of Genetically Modified in Food. Food Control, 1999, 10, pp.353-358 | |
| (Количественный конкурентный анализ ПЦР для обнаружения генетически модифицированных организмов в пищевой продукции) | |
[31] | , P., Studer, Е., and , J. Quantitation of genetically modified organisms in food. Nat Biotechnol. 1999, 17, pp.1137-1138 | |
| (Количественная оценка генетически модифицированных организмов в пищевой продукции) | |
[32] | Melzak, K.А., Sherwood, C.S., Turner, R.F.B. and Haynes, C.A. Driving Forces for DNA Adsorption to Silica in Perchlorate Solutions. J. Colloid and Interface Science, 1996, 181, pp.635-644 | |
| (Адсорбция ДНК диоксидом кремния в перхлоратных растворах) | |
[33] | Patents: ЕР 0389063, USP5, 234, 809 | |
| (Патенты: ЕР 0389063, USP5, 234, 809) | |
[34] | Sambrook, J., Fritsch, E.F., and Maniatis, Т. In: Molecular Cloning: a Laboratory Manual. 2 ed, Vol. 5, Appendix В 16, 1989 Proteinase-K. (ISBN 0-87969-509-6) | |
| (Клонирование молекул нуклеиновых кислот. Лабораторное пособие. Протеиназа-К) | |
[35] | Swiss Food Manual, Chapter 52B, Section 1 to 5. (2000)  Drucksachen und Materiaizentrale, CH-5005 Bern, available on CD. | |
| (Швейцарское пособие по пищевой продукции, глава 52В, разделы 1-5) | |
[36] | Sambrook, J., Fritsch, E.F. and Maniatis, T. In: Molecular Cloning: a Laboratory Manual. 2 ed., Vol. 5, Appendix 5, (1989) Quantitation of DNA and RNA (ISBN 0-88989-509-8) | |
| (Клонирование молекул нуклеиновых кислот. Лабораторное пособие. Количественная оценка ДНК и РНК) | |
[37] | Sambrook, J., Fritsch, E.F. and Maniatis, T. In: Molecular Cloning: a Laboratory Manual 2 ed., Vol. 1, Chapter 6, (1989) Gel electrophoresis of DNA (ISBN 0-88989-509-8) | |
| (Клонирование молекул нуклеиновых кислот. Лабораторное пособие. Электрофорез ДНК в геле) | |
[38] | Sambrook, J., Fritsch, E.F. and Maniatis, T. In: Molecular Cloning: a Laboratory Manual 2 ed., Vol. 1, Section 6.5, table 8.1 (1989) (ISBN 0-88989-509-8) | |
| (Клонирование молекул нуклеиновых кислот. Лабораторное пособие) | |
[39] | ISO/IEC 17025:2005 | General requirements for the competence of testing and calibration laboratories |
|
| (Общие требования к компетентности испытательных и калибровочных лабораторий) |
[40] | ISO 21569:2005 | Foodstuffs - Methods of analysis for the detection of genetically modified organisms and derived products - Qualitative nucleic acid based methods |
|
| (Продукты пищевые. Методы анализа на обнаружение генетически модифицированных организмов и их производных продуктов. Качественные методы, основанные на нуклеиновой кислоте) |
[41] | ISO 21570:2005 | Foodstuffs - Methods of analysis for the detection of genetically modified organisms and derived products - Quantitative nucleic acid based methods |
|
| (Продукты пищевые. Методы анализа на обнаружение генетически модифицированных организмов и их производных продуктов. Количественные методы, основанные на нуклеиновой кислоте) |
[42] | ISO Guide 30:1992 | Terms and definitions used in connection with reference materials |
|
| (Термины и определения, используемые в области стандартных образцов) |
УДК [664:604.6]:543.61.06(083.74)(476) | МКС 67.050 | IDT |
| ||
Ключевые слова: продукты пищевые, дезоксирибонуклеиновая кислота (ДНК), генетически модифицированные организмы (ГМО), количественная оценка, валидация | ||